Основные методы исследования материалов на стойкость к воздействию бактерий и грибов

Основные методы исследования материалов на стойкость к воздействию бактерий и грибов

Министерство образования и науки РФ

Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение

высшего профессионального образования

«Владимирский государственный университет

имени Александра Григорьевича и Николая Григорьевича Столетовых»

Институт прикладной математики, информатики, био- и нанотехнологий

Кафедра химической технологии

Реферат

по дисциплине: «Теоретические и экспериментальные методы исследования в химии»

на тему: «Основные методы исследования материалов на стойкость к воздействию бактерий и грибов»

Владимир, 2014 г.

ВВЕДЕНИЕ

В данной работе предпринималась попытка обобщить в локальном масштабе современные стандартные методы оценки биостойкости: стойкости к воздействию бактерий и плесневых грибов.

Биоповреждение (биологическое повреждение) - это любое изменение (нарушение) структурных и функциональных характеристик объекта, вызываемое биологическим фактором. Под биологическим фактором подразумевают организмы или их сообщества, воздействие которых на объект техники нарушает его исправное или работоспособное состояние. Наиболее агрессивны по отношению к материалам и изделиям микроорганизмы (микроорганизмы-деструкторы, биодеструкторы): микроскопические грибы, бактерии, дрожжи. Являясь составной частью окружающей среды, биодеструкторы в силу специфики своей жизнедеятельности способны быстро адаптироваться к самым различным материалам и постоянно изменяющимся условиям. Практически все используемые в изделиях техники материала подвержены повреждающему воздействию микроорганизмов - микробиологическому повреждению. Наличие и интенсивность микробиологического повреждения характеризуют стойкость объекта техники к микробиологическому фактору (микробиологическую стойкость) - свойство объекта (материала, детали, изделия) сохранять значение показателей в пределах, установленных нормативно-технической документацией в течение заданного времени в процессе или после воздействия микробиологического фактора [1].

1. ИСПЫТАНИЯ МАТЕРИАЛОВ НА СТОЙКОСТЬ К МИКРОСКОПИЧЕСКИМ ГРИБАМ

Для изучения особенностей формирования микофлоры, развивающейся на материалах и изделиях, и влияния на нее окружающей среды, а также для определения степени стойкости исследуемых объектов к воздействию грибов испытания проводят в условиях, максимально приближенных к эксплуатационным. Диапазон физико-химических факторов. которые влияют на развитие микроорганизмов, вызывающих повреждение испытуемых объектов, определяется климатом района, условиями хранения и эксплуатации материалов и изделий.

С одной стороны, задача исследователя заключается в том, чтобы на основании данных о предполагаемых условиях эксплуатации материалов и оборудования прогнозировать возможность их биокоррозии и свести ее к минимуму путем разработки рецептур материалов, стойких к воздействию микроорганизмов, или в результате изыскания биоцидов-ингибиторов биокоррозии. С другой стороны, задача заключается в создании безотходных полимерных материалов, которые могли бы утилизироваться различными микроорганизмами.

Испытание материалов на стойкость к воздействию микроорганизмов проводят как в лабораторных, так и в натурных условиях. Длительные натурные и стендовые (полупроизводственные) испытания позволяют получить наиболее достоверные данные о биостойкости материалов. Вместе с тем, для более быстрого отбора наилучших для данной цели материалов необходимо проведение лабораторных испытаний, несмотря на их меньшую достоверность.

Многолетние натурные испытания позволяют производить ежегодный сбор и сравнение полученных данных по степени колонизации исследуемых материалов микроорганизмами и по изменению свойств материалов под воздействием биологических и небиологических факторов. На основании результатов, полученных при натурных испытаниях, выбирают те места, где отмечена наиболее высокая степень биоповреждения материалов, и используют их в дальнейшем как площадки для стендовых испытаний материалов и изделий.

Исследования проводят в естественных условиях (на климатических станциях) как в открытых стеллажах (атмосферная площадка), так и в микологических домиках без доступа прямых солнечных лучей при ограниченной аэрации, а также в закрытых помещениях с высокой влажностью. Образцы материалов и изделия расставляют на стеллажах на некотором расстоянии друг от друга под углом 45-75° для обеспечения оседания на их поверхности атмосферной пыли, промышленных выбросов, растительных остатков и т. д.

Испытания материалов и изделий осуществляют также в пресной и морской воде в контакте с донными литоральными и грязевыми осадками, если того требуют условия эксплуатации. Эти методы применяют при изучении степени стойкости вулканизированной и натуральной резины металлов и сплавов, нефти, моторного топлива и т. п. к воздействию микроорганизмов.

Для испытания материалов и изделий применяют также метод с использованием почвенной суспензии («почвенный» метод) или помещают образцы на длительные сроки в почву:

)        образцы исследуемых материалов помещают в почву в чехлах из стеклоткани или капроновой ткани с мелкими ячеями или в чашки Петри, которые затем закрывают капроновой тканью. Чашки с образцами устанавливают в почве донышком вниз под углом 45-50°. Материалы, подверженные воздействию микроорганизмов (целлюлоза, ткани), помещают на подложку из стеклоткани или полиэтилена, а затем в чашки Петри;

)        исследуемые образцы помещают в чашки Петри, наносят на их поверхность агаризованную питательную среду Чапека, Ханнеберга и т д. Чашки закрывают капроновой тканью и устанавливают в почве так же, как при первом методе.

Применение агаризованных питательных сред имитирует органическое загрязнение, что ускоряет рост микроорганизмов на материалах. Образцы материалов можно помещать также на агаризованные питательные среды в чашки Петри, но без дополнительного нанесения на их поверхность указанных сред. После того как чашки с образцами помешены в почву, микромицеты прорастают через ткань, колонизируют питательную среду и распространяются на образцы, если последние не обладают фунгицидными свойствами.

Второй метод может быть рекомендован для изучения вопросов, связанных с воздействием на исследуемый образец метаболитов грибов и определением фунгицидных свойств материала. Он может быть применен также для изучения скорости утилизации некоторых полимерных материалов в почве после окончания сроков их использования. При этом испытуемый образец закладывают в чашку Петри или капроновый чехол вместе с целлюлозными полосками (фильтровальная бумага или обеззоленные фильтры), которые служат отличным питательным субстратом для почвенных микроорганизмов.

Лабораторные испытания материалов в контакте с почвой проводят следующим образом: исследуемый образец помещают на полиэтиленовую подложку, которая сохраняет субстрат даже при очень сильном его разрушении. К образцу по стеклянным капиллярам подается питание в виде жидкой минеральной среды, которая разбрызгивается на поверхности образца с одной стороны. Стеклянные капилляры соединяют со 100-миллиметровой колбой, где находится питательная среда. На другой стороне образца излишки минеральной среды испаряются с помощью таких же стеклянных капилляров. Сверху образец прикрывается тканью, которая изолирует его от почвы, насыпанной поверх ткани. Грибы прорастают на испытуемый образец через ткань. После инкубации образец (или его часть) извлекают из чашки Петри и исследуют. Испытуемые материалы можно выдержать также в сосудах с перегнойной почвой в течение 24 мес. при температуре 28 ° С и раз в три месяца увлажнять их.

При лабораторных испытаниях грибостойкости в качестве тест-организмов используют 2-3-недельные чистые культуры грибов (или их смесь), выделенные с пораженных материалов. Приготовление водной суспензии спор грибов производят следующим образом. В пробирку с культурой гриба, развившейся до стадии спороношения, в стерильных условиях добавляют 5 мл дистиллированной воды и затем взбалтывают до равномерного распределения спор в воде. Полученную суспензию выливают в колбу со 100 мл стерильной воды. Таким же образом в колбу вносят споры всех грибов, которые используются для проведения испытаний. Полученную смесь грибов взбалтывают и процеживают непосредственно в пульверизатор через гигроскопическую вату для удаления кусочков питательной среды, на которой выращивались грибы. Водная суспензия грибов используется для инфицирования образцов материалов не позднее 24 ч с момента ее приготовления.

Для приготовления суспензии спор используют различные жидкие минеральные среды без агара (например, Ван-Итерсона, Чапека) для стимуляции роста грибов на испытуемых материалах. Для инфицирования испытуемых образцов применяют также накопительные (смешанные) культуры.

Образцы материалов или детали испытывают также в климатической камере или эксикаторе, при этом их устанавливают на некотором расстоянии друг от друга (3-5 см) и опыляют суспензией спор грибов из пульверизатора с диаметром выходного отверстия 1 мм. Суспензию распределяют равномерно по всей камере или эксикатору из расчета 50 см3 на 1 м3 вне зависимости от количества испытуемых образцов.

Исследования образцов можно проводить путем опускания их в питательную среду, после чего образцы инокулируют грибами, изолированными с соответствующего материала. Термостатирование проводят при температуре 26-30° С в течение 10- 30 сут. Иногда вместо культур грибов в качестве инокулюма используют кусочки пораженных материалов.

Испытания материалов на грибостойкость проводят и в чашках Петри («чашечный» метод). При этом исследуемые образцы стерильно помещают в чашки Петри на поверхность агаризованных «голодных» и питательных сред с источником углерода, после чего их опыляют из пульверизатора водной суспензией спор грибов.

Для отбора наиболее «перспективных» образцов проводят качественную оценку их грибостойкости в чашках Петри параллельно двумя способами: методом аппликаций на инфицированном грибами сусло-агаре и путем помещения этих же образцов на стеклянные подложки, установленные на инфицированном сусло-агаре.

Отмечено, что продолжительность периода инкубации способствует утилизации субстрата грибами: так, некоторые штаммы начинают развиваться на материале только через 2-3 нед. Известно, например, что некоторые представители рода Rliizopus при 28° С и повышенной относительной влажности развиваются на полиуретановой пене уже после 7-суточного периода инкубации. В отличие от этого Aspergillus flauus при тех же условиях не дает роста на указанном субстрате даже после 29-суточной инкубации, что предполагает проведение более длительной инкубации для обнаружения роста этого гриба.

Указывается также на необходимость проведения циклических испытаний, т. е. многократного определения в процессе испытаний физико-химических и защитных свойств материалов.

Для определения степени адаптации выделенных грибов к конкретному субстрату каждый из них высевают на соответствующий материал (контрольный образец), находящийся в контакте с минеральной питательной средой. Кратко остановимся на некоторых наиболее распространенных методах лабораторных испытаний материалов.

Образцы полимерных материалов помещают в 250-миллиметровые колбы, добавляют 50 мл минеральной среды, автоклавируют 20 мин при температуре 115 и засевают кусочками мицелия длиной 2 мм или вносят в колбу петлю со спорами диаметром 2 мм. Контролем служит минеральная среда, инокулированная течение 19 сут (Mills, Eggins, 1970). Аналогичный метод применяется при изучении мицелием или спорами грибов. Термостатирование проводят при температуре 40 и 50 °С в грибостойкости поликапролактама, резиновых покрытий и т. д.

Стойкость пластификаторов и фунгицицных добавок к воздействию грибов можно определить таким образом: в 150-миллиметровую колбу вносят 50 мл растопленного агара Чапека-Докса без сахара, 5 мл пластификатора с фунгицидом или без него, все стерилизуют в автоклаве в течение 20 мин при температуре 121 °С. Смесь охлаждают до 45 °С и инокулируют спорами гриба Aspergillus niger. Контролем служит агар Чапека-Докса без органического источника углерода, инокулированный спорами этого же гриба. Термостатирование проводят при температуре 25 °С на горизонтальной качалке с частотой 50 качаний в 1 мин в течение 7 сут, после чего инкубация протекает статистически в течение 21 сут.

Другая методика, которая является модификацией рассмотренной, состоит в том, что в качестве опытной среды используют минеральный раствор Чапека-Докса с агаром, содержащий 3% сахарозы, контролем при этом является агаризованный минеральный раствор Чапека-Докса с пластификатором. Обе среды инокулируют культурой гриба.

Для проведения испытаний в лабораторных условиях широко используется визуальный метод, рекомендованный ГОСТ 9.048-75: образцы исследуемых материалов просматривают невооруженным глазом или под микроскопом (бинокулярной лупой) при 50-60-кратном увеличении. Стойкость изделий и материалов к воздействию грибов определяется по степени обрастания их мицелием, выраженной в баллах:

баллов - рост грибов не обнаружен;

балл - обнаружено прорастание отдельных спор и незначительное развитие мицелия в виде коротких неветвящихся гиф;

балла - отмечен мицелий в виде ветвящихся гиф, возможно спороношение;

балла - невооруженным глазом отчетливо виден рост грибов, мицелий покрывает менее 25% испытуемой поверхности;

балла - невооруженным глазом отчетливо виден рост грибов, мицелий покрывает более 25% испытуемой поверхности.

Аналогичный метод с использованием 3-балльной системы разработан в Чехословакии и является основой стандарта ISO.

О грибостойкости материалов и изделий можно судить также по диаметру колонии, которая образуется мицелием на исследуемой поверхности.

Оценка степени грибостойкости исследуемых образцов визуальным методом не является достаточно точной.

Количественные и биохимические методы, а также методы, основанные на определении физико-химических характеристик образцов материалов (как контрольных, так и опытных), являются наиболее объективными. Так, например, степень грибостойкости различных пластмасс, полимерных пленок оценивают по уменьшению массы опытных (пораженных) образцов по сравнению с контрольными. Данные, полученные таким способом, согласуются как удлинение, изменение эластичности, растяжение при ударе контрольных и опытных образцов.

Грибостойкость материалов можно также определить по той биомассе мицелия, которая развивается на образцах. Этот мицелий отфильтровывают, промывают в кипящей дистиллированной воде, высушивают до постоянной массы на теплом воздухе при температуре 85 °С и определяют разницу между количеством мицелия, образовавшегося в опыте и контроле.

Некоторые исследователи оценивают грибостойкость поливинилхлоридных материалов, пластификаторов, стабилизаторов, эмульгаторов, компонентов синтетических материалов не только по интенсивности роста грибов на их поверхности, но и путем измерения биологически использованного кислорода (Biological Oxygen Demand - BOD) в присутствии испытуемого материала в качестве единственного источника углерода.

Уменьшение рН среды в результате накопления экстрацеллюлярных метаболитов в процессе роста грибов на материале также может свидетельствовать о степени его грибостойкости.

О степени стойкости к воздействию грибов различных пластиков, пластификаторов, масел можно судить по увеличению или уменьшению ферментативной активности грибов в присутствии этих материалов. Так, например, при наличии в культуральной среде полиформальдегида протеолитическая и амилолитическая активность некоторых грибов увеличивается. Дибутилфталаты и пенгахлорфеноляты полностью подавляют протеолитическую активность грибов. При развитии грибов на смазочных маслах в культуральной жидкости отмечено увеличение концентрации жирных кислот.

При изучении процессов биоповреждения материалов в ряде случаев установлена связь между их физическими свойствами и грибостойкостью. Так, о грибостойкости пластмасс можно судить по изменению таких показателей, как предел прочности на разрыв и удлинение. Степень поражаемости различных полимерных материалов грибами можно определить не только по изменению физико-механических характеристик, но и с помощью сканирующего электронного микроскопа, причем этот метод в отличие от других позволяет получить более достоверную оценку грибостойкости.

Оценку степени биокоррозии стали, меди и алюминия производят по изменению механических свойств под воздействием грибов, а также электрического заряда в металле.

Приведенные выше методы исследования и оценки грибостойкости материалов широко используются при изучении биоповреж дений как естественных, так и искусственных материалов.

Однако перечисленные выше методы имеют существенные недостатки, приводящие к неадекватности оценки результатов испытаний одних и тех же материалов. Так, например, не во всех стандартах учитывается влияние внешних загрязнений на грибостойкость материалов, различаются сроки экспонирования образцов, отличаются температурный и влажностный режимы испытаний. В большинстве стандартов отсутствуют данные о контроле за изменением физико-химических характеристик материалов, прошедших испытания на грибостойкость.

Не менее актуально более широкое использование методов оценки грибостойкости материалов на физиолого-биохимической основе, что позволит изучить механизмы воздействия микроорганизмов на материалы и определить действие их метаболитов на физико-химические характеристики испытуемых материалов [2].

2. ИСПЫТАНИЯ МАТЕРИАЛОВ НА СТОЙКОСТЬ К БАКТЕРИЯМ

При испытаниях на бактерии обычно пользуются понятием «токсичность», поскольку бактерии более восприимчивы к вредным соединениям. Поэтому токсичность - это один из важных факторов, определяющих качество материалов и изделий, достаточно информативный.

Критерий токсичности - достоверное количественное значение тест-параметра, на основании которого делается вывод о токсичности материала. Среди тест-параметров наиболее часто используют выживаемость, плодовитость, подавление ферментативной и метаболической активности организмов. То есть, объект тест-параметра, живой организм, в данном случае, бактерии. В качестве тест-объекта обычно используют высокочувствительные бактерии, которые обладают способностью светиться. Поэтому их чаще всего называют люминесцентными бактериями. На основе таких бактерий разработан прибор, который регистрирует это свечение и определяет степень токсичности. Суть очень проста: если образец токсичный, бактерии погибают и свечение прекращается. По интенсивности свечения и судят о токсичности. При этом, в приборе обязательно должен быть образец с дистиллированной водой, как эталон. Токсическое действие исследуемой пробы на тест-объект определяется по уменьшению интенсивности биолюминесценции за 30-минутный период экспозиции. Количественные оценки выражаются в виде безразмерной величины - индекса токсичности «Т»:

Т = 100 (Io - I)/ Io,

где Io и I соответственно интенсивность биолюминесценции контроля и опыта при фиксированном времени экспозии исследуемой пробы с биотестом.

Методика предусматривает три пороговыз уровня индекса токсичтности:

допустимая степень токсичности образца: Т<20;

образец токсичен: 20≤T<50;

высокая токсичность образца: T≥50. [3].

Измерение интенсивности биолюминесценции и индекса токсичности проводят с помощью прибора «Биотокс-10»:

Рис. 1 - Прибор «Биотокс-10М»

3. ДРУГИЕ МЕТОДЫ

Наука не стоит на месте и постоянно придумывает что-то новое. Описанные выше методы - не единственные в своём роде.

Так, разработан метод оценки биостойкости строительных материалов в модельных средах: смеси карбоновых кислот (одноосновной - уксусной, двухосновной - щавелевой и трехосновной - лимонной). Суть его заключается в следующем: образцы исследуемых материалов укладывают в емкость, изготовленную из материала, стойкого к биоповреждению (стекло, прозрачный полимер и пр.) таким образом, чтобы расстояние между ними составляло не менее 20 мм и заливают модельной средой так, чтобы верхняя кромка среды была выше верхней грани образцов. Затем емкость герметично закрывают, и образцы выдерживают в течение 28 суток. В процессе экспозиции рН среды поддерживается на одном уровне (не выше 5). Это достигалось постоянным добавлением исходного раствора (рН=3) модельной среды с помощью специально изготовленного дозирующего устройства. По окончанию экспозиции исследуемые образцы подвергают испытаниям на прочностные характеристики.

За критерий оценки биостойкости принят коэффициент химической стойкости по прочности на сжатие (Rсж) и по прочности на изгиб (Rиз), которые показывают уровень снижения прочностных характеристик после экспозиции образцов исследуемых материалов в установленной модельной среде.

Таблица 1 - Параметр оценки биостойкости строительных материалов

Предлагаемый способ имеет ряд преимуществ:

позволяет проводить испытания исследуемых материалов на прочностные характеристики без дополнительной их дезактивации, то есть позволяет количественно оценить стойкость материалов к биоповреждению используемых и вновь разрабатываемых материалов;

не требует дополнительного дорогостоящего оборудования;

не требует получения специального разрешения органов санитарно-эпидемиологического надзора;

является безопасным для здоровья экспериментатора, так как в данном случае полностью отсутствует контакт с патогенными микроорганизмами;

является надежным и простым в реализации,

что свидетельствует о возможности широкого применения разработанного метода, в том числе и при разработке новых биостойких материалов [4].

Фельдманом М.С. с соавторами разработан хроматографический экспресс-метод определения устойчивости полимеров на основе искусственных каучуков к разрушающему воздействию микроскопических грибов. Он заключается в сравнительном анализе хроматограмм экстрактов материала до и после воздействия на него микодеструкторов, а также в сравнении хроматограмм газовой фазы продуктов жизнедеятельности грибов, культивируемых на питательной среде и в присутствии изучаемого объекта.

Веретенниковой Е.П. и Ермиловой И.А. разработан экспресс-метод оценки грибостойкости поликапроамидных (ПКА) нитей. Сущность метода заключается в определении концевых амино- и карбоксильных групп. Концевые аминогруппы определяли по количеству связанной HCl обратным титрованием растворов гидроксида натрия. Определение концевых карбоксильных групп основано на обработке ПКА-нитей раствором NaOH с последующим титрованием избытка щелочи соляной кислотой. Степень деструкции ПКА-нитей определяли по изменению статической обменной емкости.

Английскими учеными был разработан быстрый почвенный метод для определения чувствительности полиуретанов к биоповреждениям. После помещения образцов на 14 суток в почву измерялась их прочность на растяжение. Метод основан на том, что престстрессинг вызывает значительное уменьшение прочности на растяжение.

Японскими учеными при рассмотрении основных принципов методов прерывного тока и переменнотокового импеданса оценивалась возможность их применения при исследовании процесса микробиологической коррозии под лакокрасочными покрытиями.

В работах Тирпак Дж. и Бочкаревой Г.Г. с сотрудниками указывается, что если в состав полимера входят сложные эфиры, то при изучении грибостойкости материалов существенный интерес представляет определение активности эстераз плесневых грибов, которая, как правило, коррелирует со степенью разрушения полимерных материалов. Исследованиями ряда ученых показано, что при изучении биодеструкции фенолоформальдегидных, эпоксидных и некоторых других полимеров целесообразно определять активность оксидаз.

Морозовым Е.А. и др. для изучения биостойкости композиционных строительных материалов были использованы разные сочетания неорганических и органических кислот низкой концентрации, воздействия которых на различные материалы позволило бы точно моделировать процессы биологической коррозии, происходящей под воздействием продуктов метаболизма микроорганизмов на материал. В качестве предполагаемых инициаторов биологической коррозии были использованы уксусная кислота (0.01-1.0%), щавелевая кислота (0.01-1.0%), лимонная кислота (0.01-1.0%) [5].

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Создаваемые человеком материалы и изделия включаются в естественные биоценозы, становятся их функциональной частью, вовлекаются в процессы, протекающие в биосфере. В своей практической деятельности общество заинтересовано в том, чтобы разработанные материалы, изделия, сооружения в определенных экологических условиях не разрушались биодеградантами, обладали экологическим иммунитетом по отношению к живым организмам. Для этой цели в материалы вводят химические средства защиты, не всегда безразличные для человека и окружающей среды. По истечению срока эксплуатации материалы должны вовлекаться в естественный или создаваемый человеком искусственный круговорот веществ и разлагаться, предотвращая загрязнение окружающей среды.

В экологическом аспекте биоповреждения представляют собой естественный процесс, протекающий в общем круговороте веществ, который человек на время приостанавливает с помощью различных средств.

В результате биоповреждений значительно снижается ценность материалов или нарушается процесс их эксплуатации, принося экономический ущерб.

После потери основных эксплуатационных свойств защищенный от биоповреждений материал и изделия должны вновь оказаться в процессе круговорота веществ, отработавших свой срок, и подвергаться действию наиболее агрессивных микроорганизмов, вызывающих биоразрушение или биодеградацию. Это наиболее экономически приемлемый и практически автоматический процесс освобождения биосферы от ненужных материалов.

Попадание в окружающую среду промышленных отходов вместе с агентами биоповреждений в течение длительного времени активирует включение их в биосферу.

При этом на полезный хозяйственно нужный материал нападают всё более агрессивные организмы. Это выдвигает задачу обязательного управления процессами биоповреждений и биоразрушений. Оба эти процесса в реальной среде сопутствуют друг другу.

С экологической точки зрения необходимо научиться управлять ими в интересах практики. Во всех ситуациях, связанных с биоповреждениями, взаимодействуют живой организм или сообщество организмов, существующих в определённых экологических условиях, с одной стороны, и материал или изделие, являющееся объектом их нападения, с другой стороны.

Таким образом, в биоповреждающем процессе постоянно присутствуют и взаимодействуют эти два начала, что даёт основание рассматривать биоповреждения как эколого-технологическую проблему, которую решают не только инженеры-материаловеды и строители, но и микробиологи, экологи, химики и физики. Большую роль при этом играют экономисты, оценивающие ущерб от биоповреждений.

Защита от биоповреждений включает множество промежуточных и сопутствующих проблем. Исследуются аспекты деятеьности биоповреждающего агента, его строение, функциональные характеристики, поведение и образ жизни. Решающий фактор - взаимодействие живого организма с биоповреждающим материалом. Это позволяет прогнозировать потенциально ожидаемые и реальные ситуации, которые могут быть определены с помощью математического метода исследований.

При создании средств защиты против живых организмов нужно учитывать их особенности.

Эти организмы в естественных биоценозах имеют свои природные мишени, которые защищены самой природой, поэтому необходимо шире использовать природные средства защиты.

Особое внимание при решении этой проблемы следует уделять изучению природоохранных, токсикологических и санитарно-технических аспектов охраны окружающей среды и здоровья людей при использовании химических средств защиты от биоповреждений, а также на исследования, направленные на предотвращение загрязнения окружающей среды биостойкими, отслужившими свой срок материалами и не разлагающимися естественным путём средствами химической защиты материалов и изделий [6].

БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ СПИСОК

1. Горение, деструкция и стабилизация полимеров. Под ред. Заикова Г.Е. - С.-П.: НОТ, 2008, - 422 с.

. Каневская И. Г. Биологические повреждения промышленных материалов / И. Г. Каневская. - Л.: Наука, 1984. - 232 с.

. Методика определения токчисности химических веществ, полимеров, материалов и изделий с помощью биотеста «Эколюм». Методические рекомендации № 01.018-17.:Законодательство России, июль 2011 г.

. Куколева Д.А. Оценка биостойкости цементных растворов и эпоксидных полимеров в модельных средах. Автореферат.: Казань, 2012.

. Кряжев Д.В. Анализ методов оценки биостойкости промышленных материалов (критерии, подходы) // Д.В. Кряжев, В.Ф. Смирнов, О.Н. Смирнова, Е.А. Захарова, Н.А. Аникина. Вестник Нижегородского университета им. Н.И. Лобачевского, 2013, № 2

. Легонькова О.А. Тысяча и один полимер от биостойких до биоразлагаемых / О. А. Легонькова, Л. А.Сухарева. - М.: РадиоСофт, 2004. - 272 с.