Кастрация самок животных

  • Вид работы:
    Дипломная (ВКР)
  • Предмет:
    Сельское хозяйство
  • Язык:
    Русский
    ,
    Формат файла:
    MS Word
    286,71 kb
  • Опубликовано:
    2011-12-06
Вы можете узнать стоимость помощи в написании студенческой работы.
Помощь в написании работы, которую точно примут!

Кастрация самок животных

Министерство сельского хозяйства и продовольствия Республики Беларусь

Витебская ордена "Знак Почёта" государственная академия ветеринарной медицины

Кафедра акушерства








КУРСОВАЯ РАБОТА

На тему: "Кастрация самок животных"












Витебск-2011

План

 

1. Кастрация самок (кошек)

2. Цель операции, ее экономическая эффективность

3. Общие сведения о животном

4. Фиксация животного. место проведения операции

5. Оперативные доступы (при полостных операциях)

6. Анатомо-топографические данные

7. Инструменты, перевязочный материал, медикаменты

8. Профилактика хирургической инфекции

9. Обезболивание

10. Техника проведения операции

11. Возможные ослождения, их придупреждение и устранение

12. Послеоперационный уход за животным

Заключение

Использованная литература

1. Кастрация самок (кошек)

Кастрация (лат. castration - оскопление, обеспложивание) - искусственное обеспложивание самцов и самок путем оперативного удаления половых желез или путем прекращения их функции с помощью биологических, физических и химических способов.

Удаление мужских половых желез называется орхидектомией (от греч. orchis - семенник и ectome - иссечение), а женских - овариоэктомией (от лат. ovarium - яичник).

Половые железы мужских и женских особей выполняют две основные функции:

) вырабатывают половые клетки;

) выделяют гормоны. Половые гормоны, поступая в кровь, оказывают через нервную систему большое влияние на состояние организма. Только наличием семенников и яичников можно объяснить у животных своеобразность их экстерьерных форм, отдельных частей тела, поведение и другие особенности, характерные особям мужского или женского пола.

2. Цель операции, ее экономическая эффективность

Кастрация вызывает коренные изменения в обмене веществ, благодаря чему создается новое физиологическое состояние организма, которое вызывает новые качественные и количественные изменения его органов и тканей. Меняется также и поведение животных. Они становятся более спокойными.

У кастрированных самцов развиваются черты, свойственные особям женского пола, и, наоборот, кастрированные самки имеют признаки, характерные животным мужского. Особенно сильно сказывается кастрация на животных, оперированных в молодом возрасте, когда еще не закончился рост и развитие тканей и органов. Самцы, кастрированные в молодом возрасте, становятся вялыми, прожорливыми; они покорные, а поэтому удобные в эксплуатации, поскольку не проявляют драчливости и злости.

Кроме того, своевременная выбраковка и кастрация самцов облегчает содержание животных на пастбищах, предупреждает родственное спаривание и т.д.

Показания к кастрации.

Кастрацию животных выполняют с экономической, лечебной и профилактической целями.

Выключение половой функции у животных приводит к уменьшению потерь энергии на процессы жизнедеятельности. Кастрированные животные меньше двигаются, неприхотливые к кормам. Снижение общего уровня обмена веществ делает их склонными к ожирению, что ведет к увеличению калорийного качества мяса. Мышечные волокна кастрированных животных растут преимущественно за счет увеличения длины мышечных клеток при соответствующем уменьшении толщины. Поэтому в единице объема продукции увеличивается доля мышечных волокон, а уменьшается количество соединительной ткани; мясо приобретает более нежный и приятный вкус.

Таким образом, кастрацию необходимо рассматривать как один из элементов содержания животных, направленный на улучшение качественных и количественных показателей продуктивности, эксплуатации, содержания.

Мясопродукты, полученные после забоя некастрированных хряков, имеют специфический неприятный запах. Особенно он чувствуется во время приготовления пищи. Чтобы избавиться от него, а также улучшить вкусовые качества мяса и сала, хряков необходимо подвергать орхидектомии. Чаще кастрируют непременных мясных и рабочих животных.

Лечебную кастрацию самцов применяют при интравагинальных грыжах, орхитах, водянке общей влагалищной оболочки, новообразованиях на семенниках и яичниках, размозжениях семенников и др.

Самок кастрируют для улучшения откорма и при неподдающихся лечению заболеваниях яичников, обусловливающих бесплодие.

Кошек оперируют по просьбе владельцев животного с целью снятия полового влечения, патологии яичников.

3. Общие сведения о животном


Сведения о животном:

Кошка "Варвара", возраст 1,5 года. Беспородная, ее вес 3 кг 400 гр. Владелица кошки Федулова Елена Викторовна.

Общее состояние животного.

Кошка бодрая и подвижная, шерсть гладкая, блестящая, хороший аппетит, дыхание ровное, мочка носа влажная и холодная, акты мочеиспускания и дефекации регулярные. Температура тела 38,6 гр. С, пульс 120 ударов в минуту, частота дыхания 28 дыхательных движений в минуту. Положение тела в пространстве - естественное. Кошка средней упитанности.

Для измерения температуры тела пользуются ветеринарным или медицинским термометром, который предварительно встряхивают, смазывают вазелином и вводят в прямую кишку на 5 мин. После измерения температуры термометр очищают от каловых масс, моют теплой водой с мылом и дезинфицируют 2% -ным раствором лизола.

Частоту пульса определяют на бедренной артерии, приложив кончики пальцев руки с внутренней стороны бедра, или на плечевой артерии с внутренней стороны области плеча выше локтевого сустава. Частоту дыхания подсчитывают по движениям грудной клетки или брюшной стенки, а также крыльев носа животного.

Кошка содержится в квартире. Кормят кошку сухими и консервированными кормами для кошек. Кошка котилась один раз.

4. Фиксация животного. место проведения операции


Фиксация (от лат. fixatio - прикрепление, закрепление) - укрепление животных в определенном положении с целью ограждения людей проводящих лечебную или профилактическую работу от травм со стороны пациента, сохранение жизни и здоровья самого пациента и предупреждение разрушения окружающих конструкций крупными и сильными животными.

ФИКСАЦИЯ ЖИВОТНЫХ:

Исследование и оперативное вмешательство у животного требует предварительной его фиксации, которая преследует три основные цели: а) придать животному такое положение, чтобы можно было обеспечить хирургу и его помощникам свободный, безопасный доступ к оперируемому органу (области); б) ограничить защитные движения животного и создать необходимые условия для выполнения необходимых операционных мероприятий; в) устранить возможность травмирования людей и самого животного как во время фиксации, так и после нее.

Животным каждого вида применяют особые методы фиксации, разнообразие которых зависит еще и от состояния больного, характера оперативного вмешательства, метода обезболивания, возраста, силы и др.

Во время фиксации необходимо учитывать привычки животного, его характер и др. К лошади не следует подходить сзади, а к крупному рогатому скоту сбоку, так как в первом случае животное может конечностью бить назад, во втором в сторону. Прежде чем подойти к животному, необходимо его окликнуть. Следует быть осторожным и постоянно готовым быстро отступить (отскочить) от лошади, не показывая, что ее боятся; С пугливыми животными нужно обращаться ласково, терпеливо, а со злыми и непокорными, наоборот, строго и решительно. При исследовании лошади ее берут за уздечку (недоуздок) вблизи головы (чтобы не укусила), затем поглаживают шею и постепенно перемещают руку в направлении места исследования. Исследуют животное обычно вне помещения, фиксирует его владелец или конюх.

Очень трудно фиксировать крупных, строптивых животных. Поэтому им перед фиксацией необходимо применять успокаивающие (обездвиживающие) или наркотические вещества. Большинство операций (кроме полостных) при хорошо выполненном обезболивании можно делать на стоячем животном. Мелких животных почти всегда оперируют в лежачем положении.

В стоячем положении животных фиксируют при помощи веревок, в специальном станке и др. В лежачем - на специальном столе или мягкой подстилке. Поскольку фиксация в лежачем положении представляет насильственное и нередко грубое действие, то при повале крупных животных она сопряжена с риском нанести животному различные повреждения. К ним относят переломы костей, разрывы внутренних органов, потертости кожи и др. Особую опасность при этом представляют травмы или гибель людей. Поэтому для предупреждения травматизма необходимо валить животных на ровную мягкую площадку без посторонних предметов. За 10-16 ч до фиксации животных не кормят, ограничивают поение или совсем его отменяют. Применяют крепкие, мягкие, длинные веревки; лошадей расковывают. Перед повалом животного проводят инструктаж по технике безопасности.

ФИКСАЦИЯ ЛОШАДИ В СТОЯЧЕМ ПОЛОЖЕНИИ.

Прежде чем исследовать лошадь, нужно собрать сведения о ее нраве и других привычках (кусается, бьет грудными конечностями и др.). Фиксатор удерживает животное одной рукой в полусогнутом положении за узду (недоуздок), а второй - повод, сложенный в виде кольца в несколько рядов (обвивать его вокруг руки нельзя). Отдельные животные при исследовании слизистых оболочек носовой, ротовой полостей становятся "на дыбы". Чтобы предупредить это, необходимо взять две веревки, концы их зафиксировать за узду (недоуздок), затем каждый конец пропустить между грудными конечностями и согнув голову лошади, концы веревок зафиксировать узлом на холке. Можно выполнить это и при помощи повода узды: согнув голову лошади и закрепив последний на предплечье животного.

При некоторых исследованиях и небольших операциях прибегают к поднятию грудной конечности, что уменьшает площадь опоры и тем самым мешает лошади наносить удары. Для этого помощник встает сбоку конечности спиной к голове животного. Левой рукой он нажимает на лопатку, лишая лошадь равновесия, а другой проводит сверху вниз по поверхности конечности, затем берет ее за путовый сустав (за щетку нельзя) и сгибает в запястье. Поднятую конечность удерживает рукой на весу или кладет на свое колено. Если животное строптивое, тогда грудную конечность можно фиксировать при помощи веревки или тесьмы, укрепленной в области пута. При исследовании задних участков туловища и тазовых конечностей так же поднимают грудную конечность, при этом голова лошади должна быть приподнята возможно выше и слегка подвернута в сторону исследуемого (в таком случае ей труднее нанести удар).

Для поднятия и фиксации тазовой конечности необходимо больше силы, ловкости и смелости. Надо стать у крупа лошади лицом к хвосту. При этом одной рукой упираются в маклок, а другой быстро проводят по задней (плантарной) стороне конечности сверху вниз и захватывают путовый сустав. Затем конечность поднимают, отводя ее назад и немного в сторону и кладут на подставленное бедро. Далее конечность удерживают двумя руками, захватив ее за путовый сустав. Сильно тянуть конечность в сторону или под живот нельзя, так как животное в таких случаях теряет равновесие и оказывает сильное сопротивление. При исследованиях и выполнении несложных операций, требующих подхода к задним частям тела, тазовые конечности укрепляют прочными веревками, фиксируя их концы за путовый (скакательный) сустав, а другие концы веревок пропускают между грудными конечностями, обвивая предплечья, и завязывают в области спины. Строптивым лошадям к хвосту прикрепляют двойную веревку, затем пропускают ее через кольцо путового ремня, а свободные концы растягивают фиксаторы. Во избежание лишних движений, при беспокойстве, особенно строптивых лошадей, им необходимо наложить на губу закрутку. Закрутки бывают веревочные (меньше травмируют губу), деревянные и металлические.

Для надежного укрепления животных существуют различные конструкции простых и сложных операционных столов (Сапожников, Виноградов, Китаев и др.). Устройство столов основано на принципе перевода их крышки (площадки) из вертикального в горизонтальное положение. Предварительно животное подводят вплотную к столу, фиксируют к вертикально стоящей крышке посредством двух повальных ремней, охватывающих туловище и притягиваемых за скобы или через прорезы в столе. Хорошо зарекомендовал себя в стационарных условиях для крупных животных фиксационный станок системы СОВ-3. Неподвижные станки представляют собой приспособления, состоящие из четырех деревянных или металлических столбов с глухими продольными и съемными поперечными перекладинами. С целью фиксации можно применить деревянный станок. Можно работать на упрощенном операционном столе, крышка которого неподвижна и расположена в горизонтальной плоскости на высоте 50-70 см. Он состоит из деревянной рамы или широкого плоского ящика на ножках. К бортам ящика для смягчения возможных ушибов прикрепляют соломенные валики. Сверху покрывают брезентом или другим крепким материалом, фиксируя к краям рамы пряжками. В бортах с четырех сторон должно быть по две скобы (отверстия) для фиксации животного в различных положениях.

Для кастрации свинок можно применить стол Никифорова.

Мелких животных фиксируют на металлических операционных столах, имеющих по бокам отверстия для тесемок, которыми их укрепляют (стол Виноградова и др.). Он имеет рабочую поверхность площадью 660*1050 мм, выполнен из металла и позволяет фиксировать животных в стоячем, лежачем горизонтальном и вертикальном положении. Для укрепления животных в лежачем положении на предплечье и голени каждой конечности привязывают прочную, мягкую тесьму с затягивающимися петлями. При фиксации животных в боковом положении владелец (помошник) становится с той стороны, на которую хотят положить животное. Одной рукой берет животное за кожную складку на затылке, другой рукой он захватывает обе грудные конечности выше затянутых петель. Одновременно другой помощник берет животное за обе тазовые конечности также выше наложенных тесемок. Оба помощника одновременно кладут животное на операционный стол. Связанные задние конечности отводят назад, а передние - вперед и фиксируют к креплениям стола. Затем свободные концы тесьмы перебрасывают сверху туловища животного и окончательно фиксируют их к столу. После укрепления конечностей голову животного удерживают за кожную складку на затылке или с помощью головодержателя. Для фиксации на животе задние конечности вытягивают назад, а передние - вперед и привязывают к столу. Дополнительной тесьмой, проведенной сверху спины, животное фиксируют к столу. Кошек хотя они и царапаются и кусаются, можно исследовать без всяких принудительных средств (владелец удерживает кошку на столе, применяя поглаживание). При производстве болезненных процедур (операции и т.п.) их необходимо надежно укреплять, чтобы они не покусали и не поцарапали ветеринарного специалиста, производящего исследование. Рот у кошек завязывают тесьмой примерно так же, как у собак, а от когтей оберегаются либо работая в плотных кожаных перчатках, либо помещая кошку в специальные мешки или завертывают в кусок сукна, брезента, оставляя открытым участок тела, подлежащий исследованию или операции. Наиболее часто при фиксации кошки владелец одной рукой удерживает ее на столе за кожную складку в области затылка, а другой рукой за кожу спины. При проведении длительных и болезненных манипуляций животным применяют нейролептический или наркотические вещества и фиксируют на столе по общим правилам. При отсутствии специального операционного стола его можно заменить обычным деревянным, по бокам которого вбиты гвозди, за которые при помощи тесьмы фиксируют животное. Применяют и другие фиксационные станки (столы).

5. Оперативные доступы (при полостных операциях)


Лапаротомия (laparotomia) - вскрытие брюшной полости для доступа к расположенным в ней органам.

Показания. Разрез брюшной стенки открывает оперативный доступ к органам брюшной и тазовой полости для проведения хирургических вмешательств, в отдельных случаях лапаротомию выполняют с диагностической целью. В ветеринарной практике лапаротомию выполняют для оперативных вмешательств на рубце, сычуге, печени, кишечнике, матке, яичниках, мочевом пузыре. Рациональные разрезы брюшной стенки должны обеспечить сохранность целости нервов и мускулов.

Фиксация зависит от вида и состояния больного животного, характера заболевания и оптимального способа лапаротомии. Лошадей и коров чаще оперируют в станке, мелких и в отдельных случаях крупных животных укрепляют в боковом или спинном положении.

Обезболивание. У крупных животных при лапаротомии для обезболивания брюшной стенки назначают паралюмбальную и инфильтрационную по линии разреза анестезию, в отдельных случаях применяют надплевральную или висцеральную блокады.

Для мелких животных, кроме регионарной анестезии, рекомендуется общее обезболивание (наркоз).

Кастрацию кошек проводят под общим наркозом или при сочетанном применении нейролептиков и местной инфильтрационной анестезии. До начала операции катетеризацией освобождают мочевой пузырь.

кастрация самка операция обезболивание

Техника операции зависит от локализации патологического очага, топографии органа, к которому осуществляется доступ, и вида животного. Вскрытие брюшной стенки у крупных животных производят в непосредственной близости к пораженному органу, но по возможности на более высоко расположенных участках брюшной стенки для предупреждения выпадения внутренностей через рану.

У мелких животных целесообразны более низко расположенные разрезы: на боковой вентральной брюшной стенке или же на одной из боковых.

Разрезы вентральной брюшной стенки обеспечивают оперативный доступ к желудку, кишечнику, матке, яичникам, мочевому пузырю, печени. Технически они легко выполнимы при малом кровотечении. Разработано и внедрено несколько разрезов брюшной стенки.

Парамедианный разрез проводят сбоку и параллельно белой линии. Для этого разработано два рациональных доступа: боковой разрез через прямую брюшную мышцу и без ее расслоения.

При трансректальном доступе ткани рассекают сбоку параллельно белой линии на расстоянии 1,5-2 см для мелких и 4-6 см - для крупныx животных. При этом рассекают кожу, фасции, наружную стенку влагалища прямой мышцы живота. Прямую мышцу расслаивают по ходу волокон, а затем внутреннюю стенку влагалища прямой мышцы, поперечную фасцию и брюшину. Мышечная ткань, богатая сосудами, после такого разреза быстро срастается, однако ввиду повреждения нервов может развиться атрофия прямой мышцы живота, приводящая к возникновению грыжи.

Разрез в паховой области выполняют при крипторхизме, овариоэктомии, операциях на кишечнике.

Рациональные разрезы на боковой брюшной стенке показаны при вмешательствах на рубце, яичниках, матке, кишечнике. Они могут быть вертикальные и косые, с рассечением и расслоением мышечных волокон.

Паракостальный разрез выполняют при руменотомии, овариоэктомии. Рассечение тканей проводят на расстоянии 10 см от поперечно-реберных отростков поясничных позвонков и ведут параллельно последнему ребру на протяжении 18-20 см, отступив от ребра на три пальца. После кожи рассекают поверхностную и желтую брюшные фасции, наружную и внутреннюю косые брюшные мышцы, поперечную мышцу с фасцией и брюшину. После остановки кровотечения брюшину захватывают в складку пинцетом, наносят небольшой надрез и далее расширяют под контролем введенных в брюшную полость пальцев. На рану накладывают двухэтажный шов, т.е. непрерывный на брюшину с внутренней косой мышцей, второй - узловатый ­на остальные слои.

Паралюмбальный разрез осуществляют при руменотомии, овариоэктомии, операциях на кишечнике. Горизонтальный разрез выполняют длиной 12-15 см и на ширину трех пальцев латерально поперечно-реберных отростков поясничных позвонков. При таком доступе рассекаются только волокна косой мышцы живота, но возможно повреждение крупных сосудов и нервов. Кроме того, разрез проецируется настолько высоко, что увеличивается расстояние к нижним частям сетки.

Овариэктомия по белой линии живота по моему мнению лучшая для данной операции.

6. Анатомо-топографические данные


Органы размножения самки:

К органам размножения самок - orgaпa geпitalia feminina относятся парные яичники, в которых происходит развитие половых клеток и синтез половых гормонов; парные маточные трубы принимают яйцеклетку и проводят ее в матку; полунепарная матка - мешкообразный орган, в котором развивается плод. Непарные влагалище, его преддверие и вульва являются органами совокупления.

Яичник - оvаrium, s. oopharon - парный эллипсоидной формы орган и единственный выступающий в перитонеальную полость. Располагаются яичники в брюшной полости несколько дистальнее каудального полюса почки на уровне 3-4-го поясничных позвонков. Каждый яичник со всех сторон окружен яичниковой сумкой - bursa ovarica, полость которой сообщается с брюшной полостью посредством короткого продольного щелевидного отверстия, расположенного на вентральной поверхности сумки. Соответственно отверстию яичниковой сумки различают медиальную и латepaльнyю складки: медиальная направляется примерно к середине соответствующей почки, а латеральная - к выпуклому краю почки и к концу 13-го ребра. Между серозными листками бурсы находится значительное количество жировой ткани, что может затруднить поиски яичника во время операции. Длина его у кошки приближается к 1 см, а ширина не превышает 0,5 см, бугристый небольшого размера, овально-удлиненной формы. Яйцевод длинной 5-6 см и толщиной 1-3 мм расположен латерально от матки.

На яичнике различают вентролатеральный свободный край - тargo liber и дорсомедиальный брыжеечный край ­тargo mesovaricus. Последний служит местом прикрепления брыжейки яичника ­ тesovarium, на которой он подвешен в брюшной полости позади почек. Брыжейка является краниальным участком широкой маточной связки и переходит на яичник. От каудального края яичника его серозная оболочка переходит на рог матки, образуя специальную яичниковую связку - lig. ovarii proprium.

Развивающиеся в яичнике половые клетки (яйцеклетки) проходят ряд стадий: размножения (в утробный период жизни и до рождения самки), роста (с момента полового созревания) и созревания, превращаясь в зрелые половые клетки. Структурами с эндокринной функцией в яичнике являются фолликулы (вырабатывают эстрогены, обеспечивающие появление течки) и желтые тела (выделяют прогестерон, обуславливающий изменения в половом тракте и молочной железе).

В половых органах самки циклически повторяются изменения в строении и функции, что составляет эстральный цикл. Яичник половозрелой самки снаружи покрыт одним слоем плоских эпителиоцитов, выстилающих подлежащую белочную оболочку - tunica albuginea, состоящую из соединительной ткани толщиной от 70 до 80 мкм.

На разрезе яичника видны две зоны: сосудистая и фолликулярная. Сосудистая зона - zona vasculosa представляет собой соединительно-тканный остов органа, содержащий многочисленные кровеносные и лимфатические сосуды. Фолликулярная зона - zona follicularis лежит более поверхностно, непосредственно под белочной оболочкой, и в ней проходит все стадии развития яйцеклeтка. Здесь же располагаются желтые тела и интерстициальные зернистые клетки. Фолликулы - folliculi ovarii primarii в зависимости от стадии развития бывают разных размеров, а по мере созревания в них яйцеклетки продвигаются к поверхности.

Самый крупный из фолликулов - граафов пузырек - folliculi ovarii vesiculosi возвышается над поверхностью яичника и состоит из наружной оболочки и слоя фолликулярного эпителия. В полости такого фолликула содержится фолликулярная жидкость и созревшая яйцеклетка. Стенка граафова пузырька лопается - этот процесс называется овуляция - ovulatio, фолликулярная жидкость изливается, а вместе с ней выходит и созревшая яйцеклетка. На месте лопнувшего граафова пузырька из фолликулярного эпителия развивается желтое тело ­corpus luteum, временная железа внутренней секреции. Наибольшей величины желтое тело достигает во время беременнocти, а после родов оно постепенно рассасывается. При наличии в яичнике желтого тела созревание последующих яйцеклеток и овуляция становятся невозможными. Следовательно, задержавшееся желтое тело может служить причиной временного бесплодия животного.

Иннервация: plexux ovaricus. Васкуляризация: а. ovarica.

Маточная труба Маточная (фаллопиева) труба (яйцевод) - tuba uteriтa, s. salpinx представляет собой тонкую извилистую трубку, соединяющую яичник с рогом матки. Маточная труба служит для проведения яйцеклетки в рог матки и своим секретом способствует оплодотворению. Стенка ее состоит из трех оболочек: слизистой, мышечной и серозной. Слизистая оболочка состоит из эпителиального слоя и соединительнотканной основы. Эпителиальная выстилка включает реснитчатые и безреснитчатые эпителиоциты. Среди последних различают секреторные и базальные клетки. В целом слизистая оболочка образует многочисленные ветвистые складки. Мышечная оболочка представлена продольным и циркулярным слоями гладких миоцитов. Наружная серозная оболочка является продолжением на стенку брыжейки маточной трубы - mesosalpinx и содержит продольный слой гладких миоцитов. В маточной трубе происходит оплодотворение.

Краниальный конец маточной трубы образует воронку - infundibulum tubae uterinae, изрезанный край которой называется бахромкой трубы. Последняя одной своей частью прикрепляется к яичнику и называется яичниковой бахромкой - fimbria ovarica. В глубине воронки находится брюшное отверстие трубы ­ostium abdominale tubae uterinae, через которое полость яйцевода сообщается с полостью яичниковой бурсы, а через нее - с брюшной полостью. Воронка маточной трубы переходит в сильно извитую и сравнительно широкую ее часть - ампулу - ampulla tubae uterinae. За ней в каудальном направлении следует наиболее узкая часть маточной трубы, называемая перешейком - isthmus tubae uterinae. У маточного конца яйцевод несколько выпрямляется и вступает в округленное начало рога матки, образуя на нем маточное отверстие трубы - ostium uterinum tubae - в виде маленького сосочка с отверстием по центру.

Иннервация: nn. Pelvini, Васкуляризация: а. umbilicalis.

Матка - uterus, s. metra, s. hystera - трубкообразный полый перепончатомышечный орган, в котором происходит развитие зародыша, а после его созревания - выталкивание его наружу через родовые пути. У кошки и собаки матка двурогового типа - uterus blcornis; в ней различают парные рога, непарные тело и шейку.

Рога матки - cornи uteri длинные, тонкие прямые и расходятся краниально по боковой брюшной стенке без видимой границы в яйцеводы, а каудально - в тело матки. Медиовентральный край рога матки свободный, а противоположный дорсолатеральный - брыжеечный. К нему прикрепляется широкая маточная связка (маточная брыжейка) - lig. uteri lаtum (mesometrium). Она отходит от указанной поверхности рогов матки и дорсолатеральной поверхности ее тела, направляется дорсолатерально и закрепляется на поясничных мышцах латеральнее медианной (срединной) плоскости на уровне от 3-4-го поясничных до 3-го крестцового позвонка. Между удвоенной серозной оболочкой связки имеются гладкие мышечные волокна. С латеральной стороны маточной брыжейки латерально к месту, соответствующему у самцов расположению внугреннего пахового отверстия, отходит круглая связка матки - lig. uteri teres.

Тело матки - corpus uteri составляет 1/3 - 1/6 длины рогов, имеет тонкие стенки и небольшую срединную перегородку в краниальном участке. Тело матки содержит небольшую (у нерожавших) полость матки - cavum uteri. В сторону влагалища тело матки переходит в толстостенную цилиндрическую шейку матки-cervix uteri с сильно развитым сфинктером.

Стенка матки состоит из трех оболочек: внутренней - слизистой; средней - мышечной и наружной - серозной. Слизистая оболочка (эндометрий) - endometrium включает эпителиальный слой, собственную пластинку слизистой оболочки и не имеет подслизис - того слоя. Покровный эпителий однослойный, призматический, состоит из призматических реснитчатых эпителиоцитов, имеющих немногочисленные микроворсинки. В течение полового цикла изменяется высота эпителиоцитов, содержание в них гликогена и ферментов.

Мышечная оболочка (миометрий) - myometrium состоит из двух слоев пучков гладких миоцитов: наружного - продольного и внутреннего - циркулярного. Последний наиболее сильно развит в области шейки матки, формируя ее сфинктер. К концу беременности мышечная оболочка матки сильно разрастается, поскольку обеспечивает выталкивание плода наружу во время родов. Между мышечными слоями располагается промежуточный сосудистый слой.

Серозная оболочка (периметрией) - perimetrium покрывает матку снаружи, переходит с нее в широкую маточную связку, содержащую гладкие миоциты и значительное количество жировой ткани. У концов рогов от вентральной поверхности брыжейки отходит тонкая круглая связка - lig. teres, направляющаяся к внутреннему паховому кольцу. Паховый канал у самок слабо развит и оканчивается под кожей.

По брыжейке матки к ней проникают артерии, вены, лимфатические сосуды и нервы.

Небеременная матка частично лежит в тазовой полости под прямой кишкой и над мочевым пузырем, а большей своей массой простирается в поясничную область брюшной полости.

Иннервация: nn. pe1vini, р1. hypogasrtricus, Васкуляризация:

а. uterina cranialis, а. uterina media, а. uterina caudalis.

Влагалище - vagina - непарный трубкообразный орган совокупления. Стенка его состоит из слизистой мышечной и серозной (соединительно-тканной) оболочек. Иннервация: nn. pe1vini. Васкуляризация: а. vaginalis.

Преддверие влагалища - vestibulum vaginae находится в тазовой полости под прямой кишкой и является продолжением влагалища в каудальном направлении. Граница между ними проходит по поперечной складке - девственной плеве - hymen. На вентральной стенке преддверия располагается наружное отверстие мочеиспускательного канала - ostium urethrae externum. Стенка мочеполового преддверия состоит из трех оболочек. Слизистая оболочка выстлана многослойным плоским эпителием и содержит вентральные и дорсальные преддверные железы - gll. vestibulares ventrales et dorsales. Между слизистой и мышечной оболочками располагается кавернозное тело - луковица преддверия - bulbus vestibuli. С поверхности оно покрыто сжимателем преддверия. Кроме последней, в состав мышечной оболочки преддверия входит и сжиматель половой щели. Наружная оболочка мочеполового преддверия - адвентиция - формируется рыхлой соединительной тканью.

Вульва - vulva состоит из половых губ и клитора, располагается под анусом, а отделяется от него промежностью - perineum. Правая и левая половые губы представляют собой валиковидные складки кожи, соединяющиеся дорсально и вентрально спайками, формируя соответствующие углы. В толще половых губ заложен сжиматель вульвы.

Клитор - clitoris состоит из двух кавернозных тел. Он берет начало от седалищных бугров двумя ножкаvb, прикрытыми седалищно-кавернозной мышцей, называемой напрягателем клитора.

Иннервация: п. pudendus. Васкуляризация: а. pudenda interna.

ОРГАНЫ РАЗМНОЖЕНИЯ САМКИ.

. Яичниковая бурса; 2-маточная труба; 3-вход в яичниковую бурсу; 4-рог матки; 5-широкая маточная связка; 6-тело матки; 7-шейка Матки; 8-адвентиция; 9-мышечная оболочка; 10-слизистая оболочка; 11-влагалище; 12-наружное отверстие уретры; 13-железы; 14-мочеполовое преддверие; 15-клитор.

7. Инструменты, перевязочный материал, медикаменты


При выполнении кастрации кошки необходим малый хирургический набор - для мелких операций. В него входят: зажим квовоостанавливающий с насечкой и зубцами, зажим кровоостанавливающий с насечкой,, зонд желобоватый, игла хирургическая Дешана, ножницы хирургические изогнутые, пинцет хирургический, скальпель брюшистый большой, иглодержатель Матье, стерилизатор укладка для инструментов набора, размер 18,5-8,5-5,5 см. Также необходимы: клеенка медицинская подкладная на марлевой основе, тампоны стерильные 15 штук, стерильна простынь 50-50см для изоляции операционного поля, 4 тесьмы для фиксирования животного на хирургическом столе, одноразовые шприцы - 4шт,5гр.; хирургические перчатки, кеткуг стерильный в ампуле № 2, хлопчатобумажные стерильные нитки, папона послеоперационная для недопущения разлизывания животным наружного шва,5% -ный спиртовой раствор йода.

8. Профилактика хирургической инфекции


Инфекция - это совокупность происходящих в организме животного явлений в результате активного взаимодействия с внедрившимися в него микроорганизмами. Крайняя форма этого сложного биологического процесса выражается развитием инфекционного заболевания.

Возбудители инфекции могут проникать из внешней среды в организм животного различными путями, в том числе и через рану (экзогенный). Для хирурга практическое значение приобретает возможность микробного загрязнения операционной раны контактным путем от прикосновения руками, перевязочным и шовным материалом, нестерильными инструментами. Представляют также угрозу, но меньшую, капельный и воздушный (кашель, чихание и др.) пути заражения.

АСЕПТИКА И АНТИСЕПТИКА

Асептика - это способ предупреждения попадания микробов в рану путем уничтожения их на всех предметах, соприкасающихся с раной (на руках хирурга, перевязочном материале и др.), физическими и химическими средствами.

Различают два пути заражения ран: экзогенный и эндогенный.

Экзогенное заражение происходит, когда микробы попадают в рану из внешней среды (воздуха, ротовой полости и дыхательных путей хирурга, его помощников в процессе работы, при разговоре и кашле, с предметов оставляемых в ране, и т.д.).

Эндогенное заражение происходит, когда микробы попадают в рану непосредственно во время операции из очагов, имеющихся в тканях оперируемого участка тела, или заносятся в рану с кровью (гематогенный путь) или лимфой (лимфогенный путь), а также с кожного покрова, слизистых оболочек, из кишечника и дыхательных путей больного животного.

Антисептика - это комплекс лечебно-профилактических мероприятий, направленных на борьбу с микробами в ране, снижение интоксикации организма, вызванной микробным заражением раны, и повышение защитных сил животного.

Различают четыре вида антисептики: механическую, физическую, химическую и биологическую. Первая занимает главную роль в профилактике раневой инфекции. При механической антисептике удаляют из раны попавшие в нее микроорганизмы, сгустки крови, инородные тела, мертвые и инфицированные ткани механическим путем. Хорошие результаты получают при обработке свежих ран в первые часы после ранения.

Физическая антисептика заключается в использовании средств и методов, создающих в ране неблагоприятные условия для развития микроорганизмов и уменьшающих всасывание из раны микробных токсинов и продуктов распада тканей (гипертонические растворы, гигроскопические порошки, повязки; воздействие УФЛ, лазера и т.д.)

Химическая антисептика связана с использованием некоторых органических и неорганических химических веществ, которые либо убивают бактерии в ране, либо замедляют их развитие и размножение, создавая благоприятные условия для борьбы организма с проникшими в него микробами. К химическим антисептическим средствам относятся вещества, используемые для лечения ран, обработки операционного поля и рук хирурга, для стерилизации инструментов, а также предметов, необходимых для операции.

Биологическая антисептика направлена на предупреждение развития бактерий в ранах и связана с применением антибиотиков и других средств растительного или животного происхождения (желудочный сок, растительные соки, фитонциды и др.), а также препаратов, повышающих защитные силы организма (специфические сыворотки, вакцины).

Различают также поверхностную и глубокую антисептику. При поверхностной антисептике ведут борьбу с микроорганизмами в ранах, антисептические средства применяют на поверхность ран (промывание, орошение, припудривание, смазывание и др.). При глубокой антисептике применяют лекарственные препараты парентерально, внутривенно, внутриартериально, а также путем инфильтрации в ткани вокруг раны или воспалительного очага.

К химическим антисептикам относят химические вещества, проявляющие губительное неспецифическое дейcтвиe в отношении микроорганизмов (в том числе патогенных), находящихся или обитающих на кожных покровах (целостных или поврежденных) и слизистых оболочках макроорганизма.

Губительное действие антисептиков может быть бактериостатическим, а чаще бактерицидным. Однако, кроме воздействия на микрофлору, эти вещества часто оказывают биологическое действие на ткани в области применения их на организм в целом.

В настоящее время в хирургии чаще используют следующие группы препаратов: галоиды, окислители, кислоты, основания, красители, спирты, соли тяжелых металлов, альдегиды, фенолы, нитрофураны, производные 8-оксихонолина, детергенты, сульфаниламиды, антибиотики и другие сложные биологические соединения.

По назначению антисептики могут быть подразделены на средства для обработки рук хирурга перед операцией и операционного поля; для орошения и промывания ран, гнойных полостей, слизистой оболочки полости органов; для аппликации на раневую, язвенную поверхность; для пропитывания перевязочного материала.

Обработка рук хирурга и операционного поля.

Препарат, используемый для этой цели, должен удов­летворять следующим требованиям: быть эффективным против постоянной (глубокой) и поверхностной (транзитной) микрофлоры; обладать широким спектром антимикробного действия; применение препарата не должно быть связано со значительной затратой времени и должно обеспечивать эффект на протяжении всей операции; быть пригодным для различных возрастных групп животных, в том числе и молодняка, а также на любых участках кожи; препарат не должен снижать своей активности в присутствии веществ, часто употребляемых в хирургической практике (алкоголь, другие антисептики, мыла и т.д.), а также иметь достаточный белковый индекс, т.е. не активизироваться биологическими жидкостями, такими, как кровь, транссудат и др.; эффективные антисептики должны обладать следующими свойствами: локализовать инфект в ране, предупреждать его распространение и проникновение в лимфатическое и кровеносное русло; предупреждать адгезию (прилипание) микробов к тканям раневого ложа; подавлять факторы патогенности бактерий; проявлять длительный антимикробный эффект; усиливать действие антибиотиков и различных физических факторов.

В настоящее время имеется достаточно большое количество способов обработки рук хирурга и операционного поля с использованием различных антисептиков.

Наиболее широко йод используется в хирургической практике в виде 5% -ного спиртового раствора, который применяется для дезинфекции кожи, операционного поля, краев ран, пальцев хирурга и т.д. Это сильное антисептическое средство. Кроме бактерицидного и бактериостатического действия 2,5% -ный и 10% -ный спиртовые растворы йода обладают выраженным спороцидным свойством.

При воздействии на патогенные грибы растворы йода примерно в 300 раз эффективнее растворов фенола.

Однако результаты многолетнего наблюдения показали, что 5% -ная настойка йода при лечебном применении вызывает явления раздражения, особенно при чувствительной коже или использовании концентрированных растворов (сухость, шелушение, эритема, образование пузырей, изъязвление и т.д.). Он осложняет послеоперационный период и может явиться фоном для появления различных параллергических реакций.

Ввиду раздражающего действия йода приказом министра здравоохранения СССР № 720-78 было запрещено пользоваться им для дезинфекции рук и операционного поля. Взамен спиртового раствора йода рекомендуется пользоваться йодоформами: иодонатом, представляющим собой комплекс йода с поверхностно-активными веществами (ПАВ); йодогидоном и йодопироном, являющимися полийодными комплексами поливинил - пирролидона.

На основе йодофоров создано значительное количество антисептических и дезинфицирующих средств: бетадин, дизадин, певидин (Англия), бетазадон (Швейцария), дайазан (Япония), бетацид, йопрен, йодинол, лирургинол, бромеск СК, польхлор К, поллена йод К (ПНР). Для обработки свежих ран кроме растворов можно применять однокомпонентные и многокомпонентные порошки йодоформа.

В настоящее время из препаратов хлора наибольшее распространение имеет хлорамин Б, содержащий 25-29% активного хлора, который используется в 0,2-0,5% -ных растворах для дезинфекции рук и в 5% -ном растворе для обработки операционного поля.

Выраженными бактерицидными свойствами обладают хлорированные амиды органических кислот. Так, например, дихлорамид и монохлорамид янтарной кислоты в концентрации 0,005% вызывают гибель вегетативной формы микроорганизмов в течение 5-15 мин, а в концентрации 0,1% - через 20 мин вызывают гибель спор микроорганизмов. Однако хлорсодержащие препараты при постоянном применении раздражают кожу, сообщают ей запах хлора, могут вызвать аллергические реакции.

Перекись водорода, которая обладает окислительным действием. При сочетании с поверхностно-активными соединениями анионного типа бактерицидное действие перекиси водорода усиливается.

Для приготовления раствора перекиси водорода нередко используют гидроперит. Из комплексных препаратов, в которых ведущим антисептиком является перекись водорода, широкое распространение получил первомур. Он особенно широко используется для обработки рук хирургов и операционного поля. Препарат обладает высокой бактерицидностью и спороцидностью. Первомур является смесью перекиси водорода, муравьиной и надмуравьиной кислот.

Дезоксон - 1 содержит 5-6% надуксусной кислоты, 10-12% перекиси водорода, 15% уксусной кислоты и стабилизатор. Дезоксон высокобактерициден, спороциден, разрушает вирусы и грибы, 0,5% -ный раствор дезоксона-l широко рекомендуется для дезинфекции рук и операционного поля.

Калия перманганат - сильный окислитель, используемый как антисептическое средство наружно в водных растворах для промывания ран (0,1-0,5% -ныЙ).

Использование с целью профилактики раневой инфекции у больного 3% -ного спиртового раствора борной кислоты приводит к снижению общей микробной обсемененности кожи на 94,9%. Порошок борной кислоты применяют для присыпки ран.

Для обработки рук применяется также способ А.С. Довлетова, основанный на бактерицидном действии соляной кислоты.

Широкое распространение имеет спиртовой раствор бриллиантового зеленого, для обработки рук хирурга и операционного поля. Раствор бриллиантового зеленого за 15 мин убивает спороносные культуры сибирской язвы, столбняка и сенной палочки. Он входит в состав жидкости Новикова, предназначенной для обработки микротравм.

Среди других вариантов спиртовых растворов с добавлением красок рекомендуют метиленовый синий. Для обработки свежих ран пользуются водными растворами риванола - 0,05% -ным, 0,1 и 0,2% -ными.

Поливинилбутиловый спирт входит в состав аэрозольного препарата левовинизоль. Он оказывает бактериостатическое действие при ранениях мягких тканей.

Спирты имеют весьма широкий спектр антимикробного действия и обладают быстрым бактерицидным действием, следовательно, они наиболее пригодны для протирания рук хирургов. Таким образом, алкоголь - лучшее из имеющихся в настоящее время средств обеззараживания кожи и применять его следует как можно шире.

Серебро содержит протаргол (7,8-8,3%) и колларгол (70%), используемые для промывания гнойных ран. К числу наиболее эффективных препаратов серебра относится его комплекс с сульфадиазином. К этому препарату высокочувствительны клинические штаммы бактерий и грибов.

Ртуть для обработки рук хирурга чаще всего используют раствор диоцида (1: 5000).

Антибактериальный препарат сульфаминол, 1 % -ная серебряная соль сульфодиазина, лактат серебра и др., назначенных в виде кремов, мазей, аэрозолей, орошений и т.п.

Из группы альдегидов для дезинфекции рук применяют формалин и лизоформ. Производные гидроксиденилового эфира. Из соединений этого ряда, в частности, можно указать на препарат иргозан (Швейцария), спектр бактерицидного действия которого весьма широк.

Однако в отношении препаратов на основе фенола и формальдегида проявляется повышение резистентности как у грамположительных, так и у грамотрицательных бактерий.

Для бесшовного закрытия ран широко применяют клеевые композиции. Отмечена антисептическая активность биологического фибринового клея за счет наличия в нем фибронектина (Франция). Для лечения мелких ранений кожи применяют клейкую жидкость левопласт.

В Болгарии созданы 2 вида медицинского клея. При этом в качестве антимикробных препаратов использовали 5,7­дихлор-8-оксихинолин и калиево-5-нитро-8-0ксихинолат. В состав липких асептических пленок входит ацетилпиридиния хлорид, спектр действия которого распространяется на основных возбудителей раневой инфекции.

Хорошие результаты дает обработка ран такими аэрозольными препаратами, как септонекс, кубатол, хроницин и др.

Для антисептической обработки ран могут быть использованы нокситиомин, цимезоль, димексид, гексамидин с этанолом и фенилпропанолом, солюбактер, трофодермин, сибазол, миказол, диоксидин, хиноксидин, солевые растворы. В качестве антисептиков кожи в ветеринарных лечебных заведениях США применяют бензалкония хлорид (зефарин), в больницах Франции используют мертиолят натрия. В ФРГ для этих же целей предложены октенидиндигидрохлорид и производные гидроксипиразола. Для обработки кожных покровов приемлемы гетероциклические соединения, содержащие гуанидиниевые группы, бромиды 5-стирил-2-фуроилметилтрифенилфосфония и их производные, а тат же жидкий антисептик ТСР, содержащий 6,3 мг/мл фенола, 4,0 мг/мл хлора и 0,55 мг/мл йода. Клинические испытания выявили эффективность дегмина при обработке операционного поля. Данные препараты действуют бактерицидно на золотистый стафилококк, кишечную папочку, протей и синегнойную палочку, а также фунгицидно на кандиды, трихофитоны и другие патогенные виды грибов.

При хирургической обработке случайных ран применяют однокомпонентные и многокомпонентные порошки сульфаниламидов и антибиотиков: стрептоцид, норсульфазол, трициллин, биомицин, террамицин, грамицидин, а также 5-10% -ный раствор сульфапиридазина натрия, 5% -ный раствор стрептоцида в 700 - ном спирте, 0,5% -ный раствор неомицина, растворы циклина, пенициллина, гентамицина. Нередко используют аэрозольные препараты, в состав которых входят антибиотики: левовинизоль, тегразоль, оксицитозоль и др.

Наиболее эффективными антибактериальными препаратами при травмах (местное профилактическое применение), по данным ряда авторов, оказались пенициллины, аминогликозиды, цефалоспорины, линкомицин, полимиксины, рифампицин. Эти препараты дорогие, кроме того, наиболее активные из них - аминогликозиды и рифампицин - обладают сравнительно высокой токсичностью.

Особого внимания заслуживают последние данные по применению четвертичных аммониевых соединений для антисептической обработки кожных покровов.

Все четвертичные аммониевые соединения (ЧАС) относятся к повер - хностноактивным веществам (ПАВ). Они обладают широким спектром противомикробной активности и сравнительно малотоксичны.

В настоящее время мировая промышленность выпускает более 200 препаратов, содержащих ЧАС. Самыми распространенными из них являются: цифероль, цетрамид, фемероль, ципраин, фивиамон, цетавлон, цетаб, гиамин и др. В нашей стране из группы ЧАС рекомендованы в практику катапин, катионат, тетрамон, додецилэтаноламин. Для обеззараживания рук рекомендуется домифенбромид в концентрации 0,5%. Применяется также дегмицид (30% -ный раствор дегмина). Для обработки рук и операционного поля используется 1% -ный раствор дегмина, для чего дегмицид разводят в 30 раз. Для дезинфекции рук и операционного поля, получил гебитан (хлоргексидин), выпускаемый в Англии и Польше. В 0,5% -ном растворе микрофлора гибнет в течение 5-10 мин, но по отношению к спорам препарат мало активен. Добавление этилендиамин - тетраацетата и трис к хлоркесидину глюконату (0,00010) существенно увеличивает антимикробную активность хлоргексидина. Данный раствор пригоден для местного применения в качестве антисептика.

Среди катионактивных детергентов высокоэффективен роккал (ФРГ) - 1 % -ный водный раствор смеси алкилдиметилбензиламмония хлоридов, применяемый для обработки операционного поля. На споры и микобактерии туберкулеза роккал не действует.

Мощная антибактериальная активность нового отечественного поверхностно-активного антисептика АВДМ-О, отсутствие у него токсичности в оптимально-бактерицидной концентрации, высокая эффективность при экспериментальной инфекции открывают перспективу применения его наряду сроккалом.

Во ВНИИ жиров (Санкт-Петербург) изготовлен препарат новосепт для обработки рук и операционного поля. Препарат содержит весьма эффективные в бактерицидном отношении отечественные катионактивные вещества (четвертичные аммониевые соединения). Новосепт в краткий срок полностью уничтожает аэробных, анаэробных и спорообразующих микробов.

В качестве антисептического средства для обработки кожи рук, операционного поля, шовного и хирургического материалов применяют декаметоксин. Он оказывает бактерицидное действие на грамположительные и грамотрицательные микроорганизмы, грибы и споры.

Для подготовки рук медицинского персонала применяют моющие средства: ОП-7, "Новость" и др.

Для лечения мелких поверхностных повреждений кожи предлагаются мази на жировой или эмульсионной основе, содержащие соли высших четвертичных аммониевых соединений, например карбэтоксипентадецитрометиламмония бромид, а также поливинилспиртовые пленки, содержащие 5% катапола. Кроме известных отечественных и зарубежных ПАВ (катамина, зефирола, этония, амфосепта, амфоцида, родолона, эмульсепта и др., явившихся объектом широких клинических исследований и нашедших практическое применение в качестве антисептических средств, описано значительное число катионактивных веществ, обладающих бактерицидными свойствами. Лауренсом и другими авторами были изучены сульфаниламиды, содержащие четвертичный азот. Авторы установили, что антибактериальное действие препаратов обусловлено наличием радикала четвертичного аммониевого соединения.

Таким образом, широкое распространение и применение час объясняется целым рядом присущих им ценных качеств. Эти соли легко растворяются в воде, растворы обладают хорошими моющими свойствами, так как имеют низкое поверхностное натяжение, стойки, не теряют бактерицидных свойств при длительном хранении или растворении в жесткой воде, не корродируют металлы, не обладают маркостью. Соли четвертичных аммониевых оснований имеют хорошо выраженные бактериостатические и бактерицидные свойства.

СТЕРИЛИЗАЦИЯ ИНСТРУМЕНТОВ:

Существуют два способа стерилизации инструментов: действием высоких температур (кипячение, фломбирование и др.) и "холодный" - в дезинфицирующих растворах.

Для стерилизации инструментов кипячением применяют простые или электрические стерилизаторы, имеющие съемную решетку с ручками. Стерилизацию проводят в обычной воде с добавлением щелочей: 1 % натрия карбоната; 3% натрия тетрабората (бура), 0,1% едкого натра. Продолжительность кипячения зависит от растворенной в воде щелочи: с натрия карбонатом - 15 мин, с бурой - 20, с едким натром - 10 мин. Щелочи предупреждают коррозию металла, усиливают эффективность стерилизации и сокращают время кипячения.

Порядок стерилизации: раствор доводят до кипения, за этот период вода освобождается от растворенного в ней кислорода и нейтрализуется щелочью. Перед стерилизацией инструменты проверяют на пригодность. Если они были покрыты вазелином, то его вытирают спиртом или эфиром. Режущую часть скальпеля предварительно заворачивают в марлю. Хирургические иглы нанизывают на кусок марли, чтобы они не "затерялись" в стерилизаторе, если инструментов много.

По окончании стерилизации инструменты извлекают с решеткой стерилизатора и раскладывают на инструментальном столике, покрытом в три ряда стерильной простыней или полотенцем. При этом соблюдают определенный порядок - однотипные инструменты кладут на одном месте и в определенной, характерной для каждой операции последовательности. Марлю, в которой были завернуты скальпели, следует развернуть. Разложенные инструменты покрывают стерильной простыней или полотенцем. Инструменты, бывшие в употреблении (после вскрытия гнойников, работы с трупным материалом), кипятят (не менее 30 мин) в щелочной жидкости с добавлением 2 % лизола или карболовой кислоты.

Стеклянные предметы (шприцы и др.) помещают в стерилизатор в разобранном виде перед его нагреванием. Шприцы и стеклянную посуду для анестезирующих растворов кипятят в дистиллированной воде, так как щелочные растворы способствуют разложению некоторых местноанестезирующих средств.

Стерилизация инструментов фломбированием (обжиганием). Разобранный инструмент раскладывают в чистый эмалированный тазик или ванну, наливают необходимое количество спирта и зажигают его. В период горения спирта инструмент желательно перевернуть, поскольку в местах соприкосновения с дном он не может хорошо простерилизоваться. Этот способ применяется при оказании экстренной хирургической помощи, а также для стерилизации эмалированной посуды и инструментов, которые по габаритам не помещаются в стерилизатор. Инструменты также стерилизуют в специальных шкафах, при температуре 150­160 С в течение 20-30 мин. Иногда в производственных условиях инструменты стерилизуют антисептическими растворами. Для этого инструменты на 30-40 мин погружают в один из следующих растворов: 1% -ный спиртовой раствор бриллиантовой зелени; раствор этакридина 1: 500; 3-5% -ный раствор карболовой кислоты; 1-2% -ный раствор лизола или жидкость Каретникова (формалина 20,0, карболовой кислоты 3,0, углекислой соды 14,0, дистиллированной воды 1 л).

Резиновые предметы стерилизуют кипячением в дистиллиpoваннoй воде. Для этого их заворачивают в марлю (что бы не подгорели) и кипятят в течение 30 мин или холодным способом в парах формалина.

Хранение инструментов. Все инструменты после операции тщательно моют, стерилизуют и высушивают. Затем их раскладывают в сухом шкафу. Во избежание появления ржавчины на инструментах в шкаф помещают сосуд, наполненный наполовину хлористым кальцием. Инъекционные иглы можно хранить в жидкости Никифорова (спирт с эфиром поровну), при этом в каждую иглу следует ввести мандрен. Темные пятна или ржавчину, образовавшуюся нa инструментах, можно удалить с помощью мела с нашатырным спиртом в соотношении 2:

. Резиновые предметы помещают отдельно от металлических инструментов. Нельзя хранить инструменты вместе с препаратами йода, кислотами и т.п. В последнее время хирурги в своей работе широко пользуются стерильными одноразовыми шприцами и иглами, которые не требуют стерилизации и особого хранения.

ШОВНЫЙ МАТЕРИАЛ И СПОСОБЫ ЕГО СТЕРИЛИЗАЦИИ:

В настоящее время 11 классификации шовного материала учитывают в основном два признака: способность к биодеструкции; структуру нити.

По способности к биодеструкции различают: рассасывающееся материалы (кетгут, коллаген, окцелон, кацелон, викрил, дексон и др.); и нерасссасывающие материалы (шелк, капрон, лавсан, нейлон, пролен, полипролен и др.).

По структуре нити различают: Мононuть - представляет собой однородную структуру с гладкой поверхностью;

полинить - в сечении состоит из множества нитей (крученые, плетеные, комплексные нити). К современному шовному материалу предъявляют следующие требования: Биосовместимость - отсутствие токсического, аллергенного, тератогенного действия шовной нити на ткани организма. В идеале всякая реакция на шовный материал должна отсутствовать.

Биодеградация - способность шовного материала распадаться и выводиться из организма. Шовный материал должен удерживать ткани до момента образования рубца, а затем становиться ненужным. При этом скорость биодеградации не должна превышать темп образования рубца, кроме того, шовный материал должен быть атравматичным.

Для наложения хирургических швов также используют льняные и хлопчатобумажные нитки.

Стерилизация шелка. Нити шелка выпускают в бабинах (нестерильных) или в ампулах (стерильных). Намотанный на стеклянные катушки или на стекла с отшлифованными краями шелк кипятят в дистиллированной воде 30-40 мин. Хранят в 96% - ном спирте либо в жидкости Никифорова.

Стерилизуют шелк и в растворах.

Способ Садовского. Мотки шелка помещают на 15 мин в 0,5% -ный раствор нашатырного спирта, а после этого на 15 мин в 2% -ный раствор формалина на 70% -ном спирте.

Способ Тура. Шелк помещают на 24-48 ч в 1 % -ный спиртовой раствор йода. Хранят в этом же растворе. Стерилизация хлопчатобумажных и льняных ниток. Эти нитки менее прочные, чем шелковые. Они обычно используются для закрытия дефектов кожи у мелких животных, на стенку кишечника (первый этаж), брюшину. Используют нитки № 10-20. Стерилизуют их по способу Садовского или погружают на 24 ч в 4% -ный раствор формалина.

Стерилизация кетгута. Кетгут изготавливается из подслизистого и частично мышечного слоев кишечника мелкого рогатого скота, поэтому требует особой тщательной обработки. В зависимости от калибра он рассасывается в тканях животного организма от 7 до 30 дней.

Стерилизация его с применением высокой температуры исключается. Применяется он в основном для погруженных швов. Выпускают его в мотках, требующих стерилизации, или стерильным - в запаянных ампулах.

Способ Губарева. Намотанный рыхло кетгут на катушках обезжиривают в течение 12-24 ч в эфире или бензине и стерилизуют в спиртовом растворе йода (1 г йода, 2 г калия йодида, 100 г 95% -ного этилового спирта) в течение 14 дней, который заменяют свежим через 7 дней.

Способ Покатило. Без предварительного обезжиривания кетгут на З сут. погружают в 4% -ный водный раствор формалина.

Способ Садовского-Котылева. Кетгут помещают на ЗО мин в 0,5% -ный раствор нашатырного спирта, затем переносят на 30 мин в 2% -ный раствор формалина на 65% - ном спирте, в котором хранят до употребления.

Способ Чубаря. Кетгут погружают на 3 сут. в жидкость, состоящую из спирта-ректификата 70% -ного, 200,0; глицерина - 5,0; настойки йода - 8,0 и йодистого калия - 6,0. В этой жидкости кетгут хранят длительное время.

Стерилизация синтетических ниток. Этот материал стерилизуют кипячением в дистиллированной воде в течение 20 мин. Металлическая проволока и скобки, а также штифты для соединения костей стерилизуют кипячением, обычно вместе с инструментами.

СТЕРИЛИЗАЦИЯ ПЕРЕВЯЗОЧНОГО МАТЕРИАЛА:

Стерилизация автоклавированием. Перевязочный материал (бинты, салфетки, лонгеты, компрессы, тампоны и др.) и хирургическое белье (xалаты, простыни, полотенца, колпачки) стерилизуют в автоклавах под давлением. Иногда туда помещают фарфоровую и стеклянную посуду, эмалированные тазики, растворы и др. Перед автоклавированием материал и белье неплотно укладывают в биксы. Перед помещением биксов в автоклав открывают боковые отверстия, плотно закрывают крышкой. Если биксов нет, то предметы хирургического обихода помещают в холщовые мешки или пакеты. Давление 0,5 атмосфер соответствует температуре l15 гр. с; 1 атм - 120; 2 атм - 134гр. с.

Перед пользованием автоклавом закрывают спусковой кран водопаровой камеры, открывают крышку автоклава, наливают через воронку воду до 2/3 уровня водомерного стекла, плотно закрывают крышку и тщательно завинчивают болты, после проверки герметичности включают источник нагрева и в течение 15-20 мин выпускают пар; закрывают кран и поднимают давление до необходимого для стерилизации уровня. Контроль стерилизации проводят путем помещения в бикс веществ, температура плавления которых выше 100гр.С. После окончания стерилизации автоклав отключают, медленно открывают спусковой кран, постепенно выпускают пар, снижая давление, открывают крышку автоклава, извлекают биксы и сразу закрывают в них отверстия, закрывают крышку автоклава.

Стерилизацию текущим паром производят в специальном стерилизаторе Коха, а при его отсутствии - в ведре или кастрюле с крышкой. В них наливают воду на 1/3 высоты. Начало стерилизации считается с момента выхода пара, температура поднимается до 100гр. С, продолжительность не менее 30 мин. При стерилизации утюжением температуру доводят до 100гр. С, продолжительность не менее 30 мин.

При стерилизации утюжением температуру доводят до 150гр.С. Перед стерилизацией простыни, марли, салфетки увлажняют водой и проглаживают со скоростью не более 50 см в минуту, проводя по одному и тому же месту 2-3 раза с обеих сторон. Проутюженный материал сворачивают при помощи стерильных пинцетов и укладывают в стерильный бикс или оставляют завернутым в простыню.

ПОДГОТОВКА ЖИВОТНОГО И ХИРУРГА К ОПЕРАЦИИ:

Перед операцией у животного проводят клинические исследования, измеряют температуру тела, дыхание, частоту пульса, назначают голодную диету не более чем на 12 ч. Перед операцией животных выгуливают с целью освобождения толстого отдела кишечника, проводят чистку или частичное обезболивание.

Подготовка операционного поля.

Подготовку поля операции проводят в четыре этапа: механическая очистка; обезжиривание; обработка антисептиком, изоляция поля операции.

Механическая очистка включает в себя мытье с мылом (лучше хозяйственным), удаление волосяного покрова бритьем, выстриганием или выщипываньем шерсти у кошек. При этом величина подготавливаемого поля должна быть достаточной для обеспечения стерильных условий операции. Предпочтение отдают сбриванию, поскольку асептизация при этом способе более тщательная.

Обезжиривание операционного поля проводят стерильным марлевым тампоном, пропитанным О,5% -ным раствором нашатырного спирта или бензином в течение 1-2 мин. Обезжиренное поле операции обрабатывают антисептиком, по способу Фuлончuкова - Гроссиха. Сущность его заключается в том, что обезжиренное поле "дубят" и асептизируют 5% -ным раствором йода сначала после механической очистки, а затем непосредственно перед разрезом или после инфильтрационной анестезии. При этом интервал между обработками должен быть не менее 5 мин.

Обработку операционного поля антисептиком начинают от центра (места разреза или прокола) к периферии.

Изоляцию поля операции проводят с помощью стерильных простынь или клеенок, которые прикрепляют одна к другой специальными клеммами или цапками.

Подготовка рук перед операцией.

В процессе операции руки хирурга непосредственно соприкасаются с раной. Известно, что кожа рук, как и всякая другая поверхность тела, содержит множество микробов значительная часть которых относится к числу патогенных, поэтому подготовка рук перед операцией имеет особо важное значение. Ногти должны быть коротко подстрижены. Обработка рук состоит из трех этапов: а) механическая очистка; б) химическая дезинфекция; в) дубление кожи. Некоторые антисептические вещества нередко совмещают в себе бактерицидные и дубящие свойства (спиртовой раствор йода, раствор бриллиантовой зелени и др.), представляя таким образом бактерицидный дубитель или дубящий антисептик. Обработку рук ведут от кончиков пальцев и далее до локтей. Для механической обработки рук необходимо иметь щетки из растительного материала (листьев агавы, пальмы, сабура), конского волоса, синтетические, а также мыло, теплую воду.

Щетки из конского волоса обрабатывают антисептическими веществами. При выборе того или иного способа обработки рук следует всегда иметь в виду, что абсолютно стерильными руки быть не могут, они приобретают лишь относительную стерильность в течение определенного времени.

Наиболее доступными и простыми по применению являются способ Альфельда. После тщательной механической очистки в теплой воде с мылом и щеткой руки моют в течение 3 мин. Если руки не вытирают полотенцем, то обрабатывают 90o-ным спиртом, если вытирают - 70гр. Когда кожа высохнет, подногтевые пространства смазывают 5% -ным спиртовым раствором йода. Это обеспечивают стерильность кожи рук на протяжении 20-30 мин. Ни один из способов обработки рук не доводит их до состояния абсолютной стерильности, поэтому перчатки являются единственным средством, с помощью которого обеспечивается стерильность. Это особенно необходимо при проведении операций по поводу гнойно-гнилостных процессов, а также при проведении полостных операций у мелких животных. Так как целость перчаток нельзя гарантировать, то производим дополнительную по способу описанному выше, чтобы не допустить переноса на рану "перчаточного сока", состоящего из пота, слущивающегося эпителия и бактерий. Стерилизуют перчатки кипячением в дистиллированной воде в течение 30 мин.

9. Обезболивание


КОМБИНИРОВАНИЕ ПРИМЕНЕНИЕ НАРКОТИЧЕСКИХ ВЕЩЕСТВ С ПРЕПАРАТАМИ ДРУГИХ ГРУПП:

Наркоз сопровождается глубокими изменениями в состоянии животного, которые иногда бывают настолько существенными, что могут вызвать тяже тяжелые осложнения или даже смерть животного. Поэтому одним из важнейших методов современного наркоза является преднаркотическая фармакологическая подготовка животного - премедикация.

Премедикация позволяет:

облегчить техническое осуществление наркоза и его течение (устраняется фаза двигательного возбуждения),

предупредить возможные побочные явления связанные с наркозом и хирургическим вмешательством (уменьшении секреции бронхиальных желез, нарушение гемодинамики и т.д.,

уменьшить или устранить опасные вегетативные рефлексы.

В процессе подготовки животного к операции, а также во время наркоза и при выходе из него применяют успокаивающие, холинолитические, анальгетические, сердечно-сосудистые и другие фармакологические вещества. Оказывая свое действие они позволяют не применять больших доз и концентраций наркотических веществ и способствуют сохранению функций организма на наиболее физиологическом уровне.

В ветеринарной практике для премедикации относительно широко пользуются так называемыми литическими смесями, содержащими нейролептические вещества в сочетании с анальгетиками, антигистаминными и другими нейротропными препаратами.

Состав литических смесей, дозы отдельных ингредиентов, способы применения могут быть различными в зависимости от вида и состояния животного. Чаще применяют литические смеси следующего состава:

) аминазин 2,5% - 1-2 мл, дипразин 20,5% - 2мл, промедол 2% -1мл;

) аминазин 2,5% - 2 мл, этизин 0,5% - 5мл, промедол 2% - 5 мл;

) аминазин 2,5% - 2 мл, димедрол 2% - 2мл, промедол 2% - 2мл;

Данную смесь вводят внутримышечно или внутривенно за 10 - 20 минут до наркоза.

Широкое распространение получили также атропин и атропиноподобные препараты, предупреждающие рефлексы на сердце и дыхание, уменьшающие секрецию слюнных и бронхиальных желез.

Примерная схема наркоза для кошек: за 15-20 минут до наркоза подкожно или внутримышечно инъецируют 0,5-1 мл 0,1% раствора атропина; затем вводят подкожно или внутримышечно 2,5% раствор аминазина в дозе 0,1-0,2 мл или ромпун 0,15 мл/кг массы животного; при успокоении вводят неингаляционные наркотики, а в ходе операции желательно применять ингаляционные наркотики.

В связи с трудностями приобретения ветеринарными специaлиcтами анальгетических средств наркотического действия (промедол, морфин и др.) наибольшее распространение получила схема сочетанного применения кетамина (внутримышечно 5­10 мг/кг массы животного) и рометара (внутримышечно 1­3 мг/кг массы животного), позволяющая получить достаточную степень миорелаксации и анальгезии. При необходимости продления наркоза животным добавочно вводят половинные дозы указанных препаратов.

Сочетание и дозы препаратов, используемые при комбинированном наркозе для кошек.



Используемые

Путь

Для кошек



 Этапы










препараты

введения

до 1 кг

до 3 кг

свыше 3 кг

Премедикация

атропин


в/м

0,1 мл

0,2-0,3 мл

0,3 мл


за 30-40 мин.

димедрол


в/м

0,5 мл

1,0 мл

1,0-1,5 мл

 (вводится одна

атропин


в/м

0,1 мл

0,2-0,3 мл

0,3 мл


из комбинаций

димедрол


в/м

0,5 мл

1,0 мл

1,0-1,5 мл

этих препаратов)

сибазон


в/м

0,3 мл

0,5-1,0

мл

1,0-2,0

мл

Вводный наркоз

тиопентал

натрия

в/м, в/в

 -

 -


50-100

мг

 ('один из этих

кетамин


в/м, в/в

1,0-1,5 мл

1,0-2,5 мл

препаратов


Анальгин**


дробно

0,3-0,5 мл

0,5-1,0 мл

1,0-1,5 мл

** вводится

при










необходимости)










Поддержание

тиопентал

натрия

в/в дроб

-

 -


50-100 мг

анестезии


кетамин


в/в

0,3-0,5 мл

0,5-1,0

мл

1,0-1,5 мл

 (используется

рометар


в/в

0,1-0,2 мл

0,2-0,3

мл

0,5 мл


сочетание 2-3

ромпун


в/в

 -

0,3-0,5 мл

0,5 мл


препаратов)


Анальгин**


дробно

0,3-0,5 мл

0,5-1,0

мл

1,0

мл


Выведение из

кордиамин


в/в, в/м

0,2-0,3 мл

0,5-1,0

мл

1,0

мл


медикаментозного

витамин С


в/в, в/м

0,5-1,0 мл

1,0-2,5 мл

2,0-3,0 мл

 

 








сна (препараты

эуфиллин 2,4%

в/в

0,2 мл

0,3 мл


0,5


вводятся дробно










в течение 5-6 ч.)

10. Техника проведения операции

Подготовка операционного поля осуществляется по общепринятой методике. Фиксируют животное в спинном положении. Операцию проводят под общим наркозом или при сочетанном применении нейролептиков и местной инфильтрационной анестезии. До начала операции катетеризацией освобождают мочевой пузырь.

Лапаротомию брюшной стенки производят по белой линии живота. Овариэктомию через подзвдошную область проводят у крупных собак, так как оперативный доступ через белую линию затруднен (яичники расположены на короткой брыжейке в области почек), поэтому у них прибегают к боковому разрезу в подвздошной области. А у кошек вполне приемлем по белой линии живота.

Овариэктомия по белой линии живота:

Разрез длиной 5-6 см делают по белой линии живота, отступив на 1-1,5 см каудально от пупка. У кошек разрез должен проходить на 1-2 см впереди лонного сращения. Вскрывают все слои белой линии. После вскрытия брюшной полости в раневое отверстие вводят два пальца (указательный и средний) и в дорсальной части брюшной стенки отыскивают рог матки (он отличается от кишки меньшим диаметром и большей плотностью стенок) или яичник. Последний выводят из полости наружу в рану. Иглой Дешана с длинной лигатурой проходят сквозь маточную связку, брыжейку и сосуды. Затем лигатуру разрезают на две нити и перевязывают

Яичник отсекают ножницами, а культю обрабатывают спиртовым раствором йода.

Схема наложения лигатур спереди и сзади яичника при кастрации кошки.


Вместо лигатур можно делать торзирование яичников.

Для этого на связку яичника вместе с бахромкой накладывают гемостатический пинцет.

Под него подводят второй пинцет и путем скручивания удаляют яичник.

Другой яичник находят пальцами в глубине брюшной полости или проходят пальцами от конца рога матки к ее бифуркации, а затем по другому рогу к яичнику, который удаляют любым из вышеописанных способов.

После ампутации яичников рога матки погружают в брюшную полость и вводят в нее антимикробные вещества (антибиотики, сульфаниламидные препараты и др.).

На ткани белой линии накладывают непрерывный шов из кетгута или шелка, а на кожу - прерывистый узловатый шов из шелка. Кожные швы снимают на 8-10 день. В первый день после операции живот - ному создают покой. Кормление обычное.

11. Возможные ослождения, их придупреждение и устранение

ОСЛОЖНЕНИЯ ПРИ НАРКОЗЕ:

Осложнениями при наркозе являются рвота, остановка дыхания, коллапс.

Рвоту предупреждают преднаркозной голодной диетой. Если рвота наступила, голове придают более низкое положение для освобождения от рвотных масс и очищают ротовую полость тампонами. Остановка дыхания может быть рефлекторной и вследствие интоксикации при передозировке наркотиков. При остановке дыхания наркоз прекращают, животное освобождают от фиксационных ремней, подкожно или внутривенно инъецируют лобелин, кофеин и немедленно приступают к искусственному дыханию. Для этого вытягивают из ротовой полости язык, грудные конечности отводят вперед, а потом приводят к груди, тем самым ритмично ее расширяя и сдавливая. Кроме того, можно отводить в сторону одну конечность, затем прижимать ее к телу и надавливать на боковую грудную стенку ладонью. Иногда бывает эффективным ритмичное похлопывание ладонью по грудной стенке. Если при операции была вскрыта брюшная полость, в нее вводят руку и массируют диафрагму, слегка ее надавливая и похлопывая пальцами. Коллапс чаще возникает у мелких животных и лошадей.

При коллапсе наблюдается внезапное ослабление сердечной деятельности, цианоз, расширение зрачков, слабый пульс и прекращение кровотечения из разрезанных сосудов. В этом случае немедленно прекрaщают наркоз, подкожно инъецируют кофеин и камфару или внутривенно адреналин. Легкими ритмичными ударами ладони о грудную клетку массируют сердце. Крайняя мера при коллапсе - интракардиальная инъекция адреналина в первые 5 мин после остановки сердцебиения.

ПОСЛЕКАСТРАЦИОННЫЕ ОСЛОЖНЕНИЯ:

При правильном проведении операции и соответствующем содержании животных после кастрации осложнений, как правило, не бывает. Наибольшая угроза развития серьезных послеоперационных осложнений имеет место в первые 2-3 дня, т.е. к тому времени, пока не образуется надежная спайка краев брюшины. Послекастрационные осложнения могут быть самые разнообразные:

Кровотечение. При кастрации животных кровотечения могут быть как из сосудов брюшной стенки, так и из сосудов половых органов. Кровотечение из артерии яичника возникает при удалении яичников скальпелем, ножницами или непригодным эмаскулятором, а также когда лигатура, наложенная на связку и этот сосуд, была недостаточно сильно затянута.

Особенно опасные кровотечения возникают у самок, оперируемых во время эструса, когда матка и яичники сильно гиперемированы. Кровотечение может наступить во время операции или после ее завершения. Если кровотечение заметили еще до наложения швов на брюшную стенку, следует вывести соответствующий рог матки и наложить лигатуру на кровоточащий сосуд. Возникающее после операции кровотечение сопровождается малозаметными признаками, но может быть настолько интенсивным, что появляются симптомы острой анемии. Как правило, такое кровотечение останавливается самостоятельно, и кровь, вылившаяся в брюшную полость, полностью рассасывается.

Для предупреждения кровотечения при наложении лигатуры на связку и завязывании узла не следует сильно тянуть за концы лигатуры. Если первый узел затягивать при напряженной связке, лигатура во время завязывания второго узла может ослабнуть, в результате чего сосуды, сокращаясь после перевязки связки, выскальзывают из под лигатуры и начинают кровоточить. Поэтому при наложении лигатуры на связку и завязывании узла нельзя сильно тянуть за яичник. Если сильно натянуть яичник, при резком движении животного обрывается рог матки и разрывается срединная маточная артерия, начинается сильное кровотечение. Необходимо расширить рану брюшной стенки, вытянуть оборванный рог матки и на кровоточащий сосуд наложить лигатуру.

Во время вытягивания правого яичника при грубом натяжении брыжейки и матки возможен разрыв артерии матки, что сопровождается сильным кровотечением. Если это случилось, необходимо немедленно зажать гемостатическим пинцетом кровоточащий сосуд, а затем на него наложить лигатуру или перевязать брыжейку с рогом матки выше места разрыва сосуда. В крайнем случае необходимо ампутировать матку после перевя - зывания ее тела крепкой лигатуры и одновременно наложить по одной лигатуре на широкие связки матки.

Разрыв кишки и мочевого пузыря. Чаще всего встречается при кастрации свинок в результате перфорации брюшины хирургическими инструментами (ножницами, ручкой скальпеля, гемостатическим пинцетом и др.), особенно, когда кишечник или мочевой пузырь переполнены. Эту погрешность при операции обнаруживают сразу по запаху кишечных газов и выхождению из раны кишечника, мочеполовою пузыря их содержимого. В таких случаях необходимо сразу же захватить поврежденную часть кишки или мочевого пузыря и вытянуть из брюшной полости наружу, а затем наложить двухэтажный шов на рану кишечника. Стерильным тампоном с поверхности раны удаляют кровь и экскрет, промывают поврежденный участок кишки теплым раствором этакридина лактата (1: 1000) и вправляют ее в брюшную полость. Мочевой пузырь сначала освобождают от мочи, а затем на рану накладывают двухэтажный шов. После этого продолжают операцию. у этих животных в послеоперационный период, как правило, вторичных осложнений не бывает, однако необходимо для профилактики перитонита применять антибиотики.

Расхождение краев раны. Очень часто после операции диагностируют расхождение краев раны, особенно. Причина - развязывание узлов шва (особенно когда используют лигатуру из синтетических ниток), разрыв лигатур или разрыв краев раны швами, разлизывание шва самими животными. Если края раны разрываются швами на протяжении первых четырех суток, в этом случае для их соединения следует наложить дополнительные швы. При более позднем расхождении краев швы не накладывают и заживление раны идет по вторичному натяжению.

Выпадение внутренних органов. Наиболее часто выпадение внутренних органов (кишечник, мочевой пузырь, матка) встречается при лапаротомии по белой линии живота. Поэтому кастрация через область подвздоха имеет то преимущество, что при этом оперативном доступе меньше бывает пролапсов, грыж и эвентраций. Однако при этом методе отмечают отдельные случаи разнообразного смещения кишечника в сторону операционной раны, основной причиной этих осложнений является отсутствие швов на брюшине, особенно в тех случаях, когда она отслоена.

Выпадение кишечника под брюшину, где находится рыхлая клетчатка, бывает не только потому, что на брюшину не наложены швы, этому также способствует широкое отслоение брюшины во время лапаротомии, после чего здесь образуется "карман". Отслоение брюшины бывает при тупом методе перфорации брюшины, а также когда малоопытный хирург ошибочно принимает субперитонеальную рыхлую клетчатку за сальник и, не разрезая брюшину, начинает искать яичник.

Выпадение кишечника под кожу. Это осложнение возникает по трем причинам:

) когда во время лапаротомии широко рассекают брюшные мышцы, а швы накладывают только на кожу;

) когда швы наложены таким образом, что лигатуры во время напряжения брюшной стенки прорезают края раны, или когда развязываются узлы;

) когда оперативный доступ делают в средней трети подвздоха, в так называемом апоневротическом треугольнике. Выпавшая под кожу петля кишки может в той или иной степени ущемляться или прирастать к коже. Иногда возникает небольшое ущемление в период значительного наполнения кишечника. В таких случаях появление резкой боли и отсутствие аппетита у животных имеют кратковременный и рецидивирующий характер. При сильном ущемлении выпавшей под кожу петли кишечника возникают стойкие, типичные симптомы кишечной непроходимости.

Выпадение рогов матки под брюшину. Такое смещение рогов матки возможно только тогда, когда после удаления яичников рог матки при впадении его в брюшную полость не смещается в последнюю, а в забрюшинное пространство. Этому способствует отслоение брюшины во время лапаротомии и отсутствие швов на брюшине. Если кишка, попавшая за брюшину, может (благодаря перистальтике) самостоятельно вправиться в брюшную полость, то матка остается за брюшиной.

Профилактика вышеописанных осложнений:

Предупреждении тех погрешностей, которые допускаются при операции и способствуют этим осложнениям. Необходимо во время разреза брюшной

стенки избегать чрезмерного расслоения ее слоев, особенно брюшины. Для предупреждения отслоения брюшины необходимо избегать перфорации брюшины тупым способом. После удаления яичников необходимо расширить раневыми крючками рану, захватить гемостатическим пинцетом края разрезанной брюшины с обеих сторон раны, а затем указательным пальцем, введенным в брюшную полость, обвести вокруг всего края раны и тщательно проверить, не осталось ли в ней петли кишечника или рогов матки. После проверки на рану брюшины необходимо наложить шов. Лечебная помощь при выпадении кишечника или рогов матки в операционную рану может быть эффективной, если ее оказывают как можно раньше. Необходимо снять швы, раскрыть рану (разрушить фибринозную спайку) и после ревизии раневой полости вправить в брюшную полость выпавшую петлю кишки или рог матки с последующим наложением швов на брюшину и кожу. Если выпавшая в рану петля кишки будет ущемлена и развился некроз, необходимо провести резекцию этого участка. Грыжи возникают при лапаротомии по белой линии. Это объясняется значительным послаблением брюшной стенки при рассечении апоневрозов мышц брюшной стенки. Кроме того, эти ткани имеют слабую регенеративную способность. К причинам возникновения этих грыж относятся: неправильное наложение швов, когда их накладывают только на брюшину и кожу, не прошивая при этом белую линию; очень сильное стягивание погружных швов, что ведет к прорезыванию тканей или атрофии их в результате нарушения питания; нагноение погружных швов; отсутствие покоя у животных после операции; грыжи возникают чаще всего через 4-6 дней после операции, но встречаются случаи, когда они появляются позже (15-45 дней). Эти грыжи, как правило, не ущемленные, но они часто бывают невправимыми (фиксированными). С проявлением такой грыжи необходимо проводить грыжесечение. Время проведения операции следует определять в каждом конкретном случае, но если она появилась в первые дни после кастрации, то операцию делают после заживления раны. При ущемленных грыжах операцию выполняют немедленно.

12. Послеоперационный уход за животным

При правильном проведении операции, соблюдений всех правил асептики и антисептики и соответствующем содержании животного после кастрации, осложнений, как правило, не бывает. После операции ушитая кожная рана обрабатывается септонексом. На животное надевается папона, для предупреждения разлизывания швов и расхождения раны. В первый день после операции животному создают покой. В домашних условиях хозяева животного обрабатывают кожную рану спиртовым раствором йода. Кожные швы снимаются на 8-10 день после операции.

Заключение


Данная операция - овариоэктомия у кошки, по белой линии живота, проведена правильно. Перед проведением операции я подготовилась: изучила теорию (элементы хирургической операции)

Прежде, чем приступить к операции, я на практике наблюдала проведение данной операции с работающим в ветеринарном учереждении хирургом. Саму операцию я проделала под его руководством. Спустя 10 дней после операции, при осмотре хирургической раны, было обнаружено: наружные кожные швы у кошки сраслись, расхождение краев раны не наблюдается, края раны чистые, сухие, послекастрационных осложнений (выпадение внутренних органов, выпадение кишечника под кожу и т.д.) при осмотре не обнаружены. Животное чувствует себя хорошо. Температура в норме.

Использованная литература


1. "Анатомия собаки и кошки" Профессор Н.В. Зеленевский, профессор Г.А. Хонин, Санкт-Петербург 2004г. (стр.163-167)

. Учебник "Оперативная хирургия с основами топографической анатомии"Под редакцией профессора Э.И. Веремея, профессора Б.С. Семенова. УП "Издательство" Урожай"", 201 год.

. "Хирургические операции у собак и кошек" (авт.: Паршин А.А., Соболев В.А., Созинов В. А.), ООО"Аквариум ЛТД", 1999, 2001 гг.

Похожие работы на - Кастрация самок животных

 

Не нашел материал для своей работы?
Поможем написать качественную работу
Без плагиата!